Diätetische Anti-Aging-Polyphenole und mögliche Mechanismen Teil 3
Aug 01, 2023
Referenz-Forts.
Glykosid von Cistanche kann auch die SOD-Aktivität im Herz- und Lebergewebe erhöhen und den Gehalt an Lipofuscin und MDA in jedem Gewebe erheblich reduzieren, wodurch verschiedene reaktive Sauerstoffradikale (OH-, H₂O₂ usw.) effektiv abgefangen und vor verursachten DNA-Schäden geschützt werden durch OH-Radikale. Cistanche-Phenylethanoidglykoside haben eine starke Fähigkeit, freie Radikale abzufangen, eine höhere Reduktionsfähigkeit als Vitamin C, verbessern die Aktivität von SOD in der Spermiensuspension, reduzieren den MDA-Gehalt und haben eine gewisse schützende Wirkung auf die Funktion der Spermienmembran. Cistanche-Polysaccharide können die durch D-Galaktose verursachte Aktivität von SOD und GSH-Px in Erythrozyten und Lungengewebe experimentell seneszierender Mäuse steigern, außerdem den Gehalt an MDA und Kollagen in Lunge und Plasma verringern und den Gehalt an Elastin erhöhen eine gute Abfangwirkung auf DPPH, verlängert die Zeit der Hypoxie bei seneszenten Mäusen, verbessert die Aktivität von SOD im Serum und verzögert die physiologische Degeneration der Lunge bei experimentell seneszenten Mäusen. Bei der zellulären morphologischen Degeneration haben Experimente gezeigt, dass Cistanche über eine gute antioxidative Fähigkeit verfügt und hat das Potenzial, ein Medikament zur Vorbeugung und Behandlung von Hautalterungskrankheiten zu sein. Gleichzeitig hat Echinacosid in Cistanche eine erhebliche Fähigkeit, freie DPPH-Radikale abzufangen, reaktive Sauerstoffspezies abzufangen und den durch freie Radikale verursachten Kollagenabbau zu verhindern, und hat auch eine gute Reparaturwirkung auf Schäden durch freie Thymin-Radikalanionen.
Klicken Sie auf Anti-Aging Cistanche Portugal
【Für weitere Informationen:george.deng@wecistanche.com / WhatApp:8613632399501】
27. Bayard, V.; Chamorro, F.; Motta, J.; Hollenberg, Nk Beeinflusst die Flavanolaufnahme die Mortalität aufgrund von Stickoxid-abhängigen Prozessen? Ischämische Herzkrankheit, Schlaganfall, Diabetes mellitus und Krebs in Panama. Int. J. Med. Wissenschaft. 2007, 4, 53–58. [CrossRef] [PubMed]
28. Hollenberg, NK; Martinez, G.; McCullough, M.; Meinking, T.; Passan, D.; Preston, M.; Rivera, A.; Taplin, D.; Vicaria-Clement, M. Alterung, Akkulturation, Salzaufnahme und Bluthochdruck in der Kuna von Panama. Hypertension 1997, 29, 171–176. [CrossRef]
29. Hollenberg, NK; Naomi, F. Ist dunkle Schokolade dunkel? Auflage 2007, 116, 2360–2362. [CrossRef]
30. Kirschbaum, J. Auswirkung von zugesetzter Nahrungsschokolade auf die Lebenserwartung des Menschen. Nutrition 1998, 14, 869. [CrossRef]
31. Holt, RR; Lazarus, SA; Sullards, MC; Zhu, QY; Schramm, DD; Hammerstone, JF; Fraga, CG; Schmitz, HH; Keen, CL Procyanidin-Dimer B2 [Epicatechin-(4beta-8)-Epicatechin] im menschlichen Plasma nach dem Verzehr von flavanolreichem Kakao. Bin. J. Clin. Nutr. 2002, 76, 798–804. [CrossRef]
32. Martinez-Gonzalez, MA; Martin-Calvo, N. Mittelmeerdiät und Lebenserwartung; über Olivenöl, Obst und Gemüse hinaus. Curr. Meinung. Klin. Nutr. Metab. Pflege 2016, 19, 401–407. [CrossRef]
33. Menotti, A.; Puddu, PE; Maiani, G.; Catasta, G. Herz-Kreislauf- und andere Todesursachen als Funktion der Lebensgewohnheiten in einer quasi ausgestorbenen männlichen Bevölkerung mittleren Alters. Eine 50-jährige Folgestudie. Int. J. Cardiol 2016, 210, 173–178. [CrossRef]
34. Bellavia, A.; Tektonidis, TG; Orsini, N.; Wolk, A.; Larsson, SC Quantifizierung der Vorteile der Mittelmeerdiät im Hinblick auf das Überleben. EUR. J. Epidemiol. 2016, 31, 527–530. [CrossRef] [PubMed]
35. Harmon, BE; Boushey, CJ; Shvetsov, YB; Ettienne, R.; Reedy, J.; Wilkens, LR; Le Marchand, L.; Henderson, BE; Kolonel, LN Assoziationen wichtiger Ernährungsqualitätsindizes mit der Sterblichkeit in der multiethnischen Kohorte: Das Dietary Patterns Methods Project. Bin. J. Clin. Nutr. 2015, 101, 587–597. [CrossRef] [PubMed]
36. Leri, M.; Scuto, M.; Ontario, ML; Calabrese, V.; Calabrese, EJ; Bucciantini, M.; Stefani, M. Gesunde Wirkung pflanzlicher Polyphenole: Molekulare Mechanismen. Int. J. Mol. Wissenschaft. 2020, 21, 1250. [CrossRef] [PubMed]
37. Ahamad, J.; Toufeeq, I.; Khan, MA; Ameen, MSM; Antwort, ET; Uthirapathie, S.; Mir, SR; Ahmad, J. Oleuropein: Ein natürliches Antioxidansmolekül bei der Behandlung des metabolischen Syndroms. Phytother. Res. 2019, 33, 3112–3128. [CrossRef]
38. Pitozzi, V.; Jacomelli, M.; Catelan, D.; Servili, M.; Taticchi, A.; Biggeri, A.; Dolara, P.; Giovannelli, L. Langfristiges diätetisches natives Olivenöl extra, das reich an Polyphenolen ist, kehrt altersbedingte Störungen der motorischen Koordination und des kontextuellen Gedächtnisses bei Mäusen um: Rolle von oxidativem Stress. Verjüngungsres. 2012, 15, 601–612. [CrossRef] [PubMed]
39. Bayram, B.; Ozcelik, B.; Grimm, S.; Röder, T.; Schrader, C.; Ernst, IM; Wagner, AE; Grune, T.; Frank, J.; Rimbach, G. Eine Ernährung, die reich an Olivenölphenolen ist, reduziert oxidativen Stress im Herzen von SAMP8-Mäusen durch Induktion der Nrf2--abhängigen Genexpression. Verjüngungsres. 2012, 15, 71–81. [CrossRef]
40. Lauretti, E.; Iuliano, L.; Pratico, D. Natives Olivenöl extra verbessert die Wahrnehmung und Neuropathologie der 3xTg-Mäuse: Rolle der Autophagie. Ann. Klin. Übers. Neurol. 2017, 4, 564–574. [CrossRef]
41. De La Cruz, JP; Del Rio, S.; Arrebola, MM; Lopez-Villodres, JA; Jebrouni, N.; Gonzalez-Correa, JA Wirkung von nativem Olivenöl plus Acetylsalicylsäure auf Hirnschnittschäden nach Hypoxie-Reoxygenierung bei Ratten mit Diabetes mellitus vom Typ 1-. Neurosci. Lette. 2010, 471, 89–93. [CrossRef]
42. Giovannelli, L. Wohltuende Wirkung von Olivenölphenolen auf den Alterungsprozess: Experimentelle Beweise und mögliche Wirkmechanismen. Nutr. Altern 2012, 1, 207–223. [CrossRef]
43. Serreli, G.; Deiana, M. Polyphenole aus nativem Olivenöl extra: Modulation zellulärer Pfade im Zusammenhang mit Oxidationsmitteln und Entzündungen beim Altern. Zellen 2020, 9, 478. [CrossRef]
44. Dilberger, B.; Passon, M.; Asseburg, H.; Silaidos, Lebenslauf; Schmitt, F.; Schmiedl, T.; Schieber, A.; Eckert, GP Polyphenole und Metaboliten verbessern das Überleben von Nagetieren und Nematoden – Einfluss von Mitochondrien. Nutrients 2019, 11, 1886. [CrossRef]
45. Behörde, wissenschaftliche Stellungnahme des EFS zur Begründung gesundheitsbezogener Angaben im Zusammenhang mit Polyphenolen in Oliven und zum Schutz. EFSA J. 2011, 9, 2033.
46. Saxena, S.; Caroni, P. Selektive neuronale Vulnerabilität bei neurodegenerativen Erkrankungen: Von Stressschwellen bis zur Degeneration. Neuron 2011, 71, 35–48. [CrossRef]
47. Kennedy, BK; Berger, SL; Brunet, A.; Campisi, J.; Cuervo, AM; Epel, ES; Franceschi, C.; Lithgow, GJ; Morimoto, RI; Pessin, JE; et al. Gerowissenschaften: Zusammenhang zwischen Alterung und chronischer Krankheit. Zelle 2014, 159, 709–713. [CrossRef] [PubMed]
48. Wang, JC; Bennett, M. Alterung und Atherosklerose: Mechanismen, funktionelle Konsequenzen und potenzielle Therapeutika für die Zellalterung. Zirkel. Res. 2012, 111, 245–259. [CrossRef] [PubMed]
49. Barnham, KJ; Masters, CL; Bush, AI Neurodegenerative Erkrankungen und oxidativer Stress. Nat. Rev. Drug Discov. 2004, 3, 205–214. [CrossRef]
50. Singh, A.; Kukreti, R.; Saso, L.; Kukreti, S. Oxidativer Stress: Ein wichtiger Modulator bei neurodegenerativen Erkrankungen. Molecules 2019, 24, 1583. [CrossRef]
51. Bordoni, L.; Gabbianelli, R. Mitochondriale DNA und Neurodegeneration: Welche Rolle spielen Antioxidantien in der Nahrung? Antioxidantien 2020, 9, 764. [CrossRef]
52. Scalbert, A.; Manach, C.; Morand, C.; Remesy, C.; Jimenez, L. Nahrungspolyphenole und die Vorbeugung von Krankheiten. Krit. Rev. Food Sci. Nutr. 2005, 45, 287–306. [CrossRef] [PubMed]
53. Bhullar, KS; Rupasinghe, HP Polyphenole: Multipotente Therapeutika bei neurodegenerativen Erkrankungen. Oxidatives Med. Zelle. Longev. 2013, 2013, 891748. [CrossRef]
54. Farzaei, MH; Tewari, D.; Momtaz, S.; Argüelles, S.; Nabavi, SM Targeting des ERK-Signalwegs durch Polyphenole als neuartige Therapiestrategie für Neurodegeneration. Lebensmittelchem. Toxicol. Int. J. Publ. Br. Ind. Biol. Res. Assoc. 2018, 120, 183–195. [CrossRef] [PubMed]
55. Farzaei, MH; Bahramsoltani, R.; Abbasabadi, Z.; Braidy, N.; Nabavi, SM Rolle von Catechinen aus grünem Tee bei der Prävention altersbedingter kognitiver Beeinträchtigungen: Pharmakologische Ziele und klinische Perspektive. J. Zelle. Physiol. 2019, 234, 2447–2459. [CrossRef] [PubMed]
56. Arbo, BD; André-Miral, C.; Nasre-Nasser, RG; Schimith, LE; Santos, MG; Costa-Silva, D.; Muccillo-Baisch, AL; Hort, MA Resveratrol-Derivate als potenzielle Behandlungsmethoden für die Alzheimer- und Parkinson-Krankheit. Vorderseite. Alternde Neurowissenschaften. 2020, 12, 103. [CrossRef]
57. Giuliano, C.; Cerri, S.; Blandini, F. Mögliche therapeutische Wirkungen von Polyphenolen bei der Parkinson-Krankheit: Präklinische In-vivo- und In-vitro-Studien. Neuronale Regeneration. Res. 2021, 16, 234–241. [CrossRef] [PubMed]
58. Malar, DS; Prasanth, MI; Brimson, JM; Sharika, R.; Sivamaruthi, BS; Chaiyasut, C.; Tencomnao, T. Neuroprotektive Eigenschaften von grünem Tee (Camellia sinensis) bei der Parkinson-Krankheit: Ein Überblick. Molecules 2020, 25, 3926. [CrossRef]
59. Elejalde, E.; Villarán, MC; Alonso, RM Trauben-Polyphenol-Ergänzung gegen durch körperliche Betätigung verursachten oxidativen Stress. J. Int. Soc. Sporternährung 2021, 18, 3. [CrossRef]
60. Tikhonova, MA; Tikhonova, NG; Tenditnik, MV; Ovsyukova, MV; Akopyan, AA; Dubrovina, NI; Amstislavskaya, TG; Khlestkina, EK Auswirkungen von Traubenpolyphenolen auf die Lebensdauer und neuroinflammatorische Veränderungen im Zusammenhang mit neurodegenerativen Parkinson-ähnlichen Störungen bei Mäusen. Molecules 2020, 25, 5339. [CrossRef]
61. Sharma, D.; Sethi, P.; Hussain, E.; Singh, R. Curcumin wirkt den durch Aluminium verursachten altersbedingten Veränderungen des oxidativen Stresses, Na plus, K plus ATPase und Proteinkinase C in Gehirnregionen erwachsener und alter Ratten entgegen. Biogerontology 2009, 10, 489–502. [CrossRef]
62. Bitu Pinto, N.; da Silva Alexandre, B.; Neves, KR; Silva, AH; Leal, LK; Viana, GS Neuroprotektive Eigenschaften des standardisierten Extrakts aus Camellia sinensis (Grüner Tee) und seiner wichtigsten bioaktiven Komponenten, Epicatechin und Epigallocatechingallat, im 6-OHDA-Modell der Parkinson-Krankheit. Evidenz. Basierend auf komplementärer Altern. Med. eCAM 2015, 2015, 161092. [CrossRef] [PubMed]
63. Iwata, K.; Wu, Q.; Ferdousi, F.; Sasaki, K.; Tominaga, K.; Uchida, H.; Arai, Y.; Szele, FG; Isoda, H. Zuckerrohr-Extrakt (Saccharum officinarum L.) verbessert den kognitiven Rückgang im Seneszenzmodell SAMP8-Mäuse: Modulation der neuronalen Entwicklung und des Energiestoffwechsels. Vorderseite. Zellentwickler. Biol. 2020, 8, 573487. [CrossRef] [PubMed]
64. Sasaki, K.; Davies, J.; Doldan, NG; Arao, S.; Ferdousi, F.; Szele, FG; Isoda, H. 3,4,5-Tricaffeoylchininsäure induziert die adulte Neurogenese und verbessert Lern- und Gedächtnisdefizite bei alternden Modellmäusen mit beschleunigter Seneszenzneigung 8. Altern 2019, 11, 401–422. [CrossRef]
65. Liang, Z.; Zhang, B.; Su, WW; Williams, PG; Li, QX C-Glycosylflavone lindern Tau-Phosphorylierung und Amyloid-Neurotoxizität durch GSK3-Hemmung. ACS Chem. Neurosci. 2016, 7, 912–923. [CrossRef] [PubMed]
66. Dludla, PV; Joubert, E.; Müller, CJF; Louw, J.; Johnson, R. Hyperglykämie-induzierter oxidativer Stress und kardioprotektive Wirkungen von Rooibos-Flavonoiden und Phenylbrenztraubensäure-2-O-beta-D-glucosid bei Herzerkrankungen. Nutr. Metab. 2017, 14, 45. [CrossRef]
67. Ziqubu, K.; Dludla, PV; Joubert, E.; Müller, CJF; Louw, J.; Tiano, L.; Nkambule, BB; Kappo, AP; Mazibuko-Mbeje, SE Isoorientin: Ein Nahrungsflavon mit dem Potenzial, verschiedene Stoffwechselkomplikationen zu lindern. Pharmakol. Res. 2020, 158, 104867. [CrossRef]
68. Jesus, CCM; Araújo, MH; Simão, T.; Lasunskaia, EB; Barth, T.; Muzitano, MF; Pinto, SC Naturprodukte aus der Vitex-Polygamie und ihre antimykobakterielle und entzündungshemmende Wirkung. Nat. Prod. Res. 2020, 1–5. [CrossRef]
69. Ma, L.; Zhang, B.; Liu, J.; Qiao, C.; Liu, Y.; Li, S.; Lv, H. Isoorientin übt eine schützende Wirkung gegen 6-OHDA-induzierte Neurotoxizität aus, indem es den AMPK/AKT/Nrf2-Signalweg aktiviert. Lebensmittelfunktion. 2020, 11, 10774–10785. [CrossRef]
70. Grewal, R.; Reutzel, M.; Dilberger, B.; Hein, H.; Zotzel, J.; Marx, S.; Tretzel, J.; Sarafeddinov, A.; Fuchs, C.; Eckert, Allgemeinmediziner: Gereinigtes Oleocanthal und Ligstroside schützen in Modellen der frühen Alzheimer-Krankheit und der Gehirnalterung vor mitochondrialer Dysfunktion. Exp. Neurol. 2020, 328, 113248. [CrossRef]
71. Schaffer, S.; Müller, WE; Eckert, GP Zytoprotektive Wirkung von Abwasserextrakt aus Olivenmühlen und seinem Hauptbestandteil Hydroxytyrosol in PC12-Zellen. Pharmakol. Res. 2010, 62, 322–327. [CrossRef]
72. Schaffer, S.; Podstawa, M.; Visioli, F.; Bogani, P.; Müller, WE; Eckert, GP Hydroxytyrosolreicher Abwasserextrakt aus Olivenmühlen schützt Gehirnzellen in vitro und ex vivo. J. Agrar. Lebensmittelchem. 2007, 55, 5043–5049. [CrossRef] [PubMed]
73. Ötzkan, S.; Müller, WE; Holz, WG; Eckert, GP Auswirkungen von 7, 8-Dihydroxyflavon auf Lipid-Isoprenoid- und Rho-Proteinspiegel im Gehirn gealterter C57BL/6-Mäuse. NeuroMol. Med. 2020, 1–10. [CrossRef]
74. Fitzenberger, E.; Deusing, DJ; Marx, C.; Boll, M.; Lüersen, K.; Wenzel, U. Das Polyphenol Quercetin schützt die mev-1-Mutante von Caenorhabditis elegans vor einer glukoseinduzierten Verringerung des Überlebens unter Hitzestress, abhängig von SIR-2.1, DAF-12 und proteasomal Aktivität. Mol. Nutr. Lebensmittelres. 2014, 58, 984–994. [CrossRef]
75. Phiel, CJ; Wilson, CA; Lee, VMY; Klein, PS GSK-3 reguliert die Produktion von Amyloidpeptiden der Alzheimer-Krankheit. Nature 2003, 423, 435–439. [CrossRef]
76. Kolarova, M.; Garcia-Sierra, F.; Bartos, A.; Ricny, J.; Ripova, D. Struktur und Pathologie des Tau-Proteins bei der Alzheimer-Krankheit. Int. J. Alzheimer Dis. 2012, 2012, 731526. [CrossRef]
77. Qin, XY; Cheng, Y.; Yu, LC Potenzieller Schutz von Grüntee-Polyphenolen gegen intrazelluläre Amyloid-Beta-induzierte Toxizität an primär kultivierten präfrontalen kortikalen Neuronen von Ratten. Neurosci. Lette. 2012, 513, 170–173. [CrossRef]
78. Czachor, J.; Miłek, M.; Galiniak, S.; St ˛epie ´n, K.; D˙zugan, M.; Moło ´n, M. Kaffee verlängert die chronologische Lebensdauer von Hefen durch antioxidative Eigenschaften. Int. J. Mol. Wissenschaft. 2020, 21, 9510. [CrossRef]
79. Cho, B.-H.; Choi, S.-M.; Kim, J.-T.; Kim, BC Zusammenhang zwischen Kaffeekonsum und nichtmotorischen Symptomen bei medikamentennaiver Parkinson-Krankheit im Frühstadium. Parkinsonismus Relat. Unordnung. 2018, 50, 42–47. [CrossRef]
80. Socała, K.; Szopa, A.; Serefko, A.; Poleszak, E.; Wla ´z, P. Neuroprotektive Wirkungen bioaktiver Kaffeeverbindungen: Ein Überblick. Int. J. Mol. Wissenschaft. 2021, 22, 107. [CrossRef]
81. Gao, L.; Li, X.; Meng, S.; Matte.; Wan, L.; Xu, S. Chlorogensäure lindert A (25-35)-induzierte Autophagie und kognitive Beeinträchtigung über den mTOR/TFEB-Signalweg. Drogen Des. Entwickler Dort. 2020, 14, 1705–1716. [CrossRef] [PubMed]
82. Wang, J.; Ferruzzi, MG; Ho, L.; Blount, J.; Janle, EM; Gong, B.; Pan, Y.; Gowda, GA; Raftery, D.; Arrieta-Cruz, I.; et al. Gehirngesteuerte Proanthocyanidin-Metaboliten zur Behandlung der Alzheimer-Krankheit. J. Neurosci. 2012, 32, 5144–5150. [CrossRef]
83. Sutherland, BA; Rahman, RM; Appleton, I. Wirkmechanismen von Catechinen aus grünem Tee, mit Schwerpunkt auf Ischämie-induzierter Neurodegeneration. J. Nutr. Biochem. 2006, 17, 291–306. [CrossRef] [PubMed]
84. Gadkari, PV; Balaraman, M. Catechins: Quellen, Extraktion und Einkapselung: Eine Rezension. Lebensmittel-Bioprod. Verfahren. 2015, 93, 122–138. [CrossRef]
85. Li, Q.; Zhao, HF; Zhang, ZF; Liu, ZG; Pei, XR; Wang, JB; Li, Y. Die langfristige Verabreichung von Grüntee-Catechin verhindert räumliches Lernen und Gedächtnisstörungen bei seneszenzbeschleunigten Mäusen, die zu Mäusen neigen-8, indem Abeta1-42-Oligomere verringert und synaptische Plastizitäts-bezogene Proteine im Hippocampus hochreguliert werden. Neuroscience 2009, 163, 741–749. [CrossRef]
86. Pallauf, K.; Rimbach, G.; Rupp, PM; Chin, D.; Wolf, IM Resveratrol und Lebensdauer in Modellorganismen. Curr. Med. Chem. 2016, 23, 4639–4680. [CrossRef]
87. Du, LL; Xie, JZ; Cheng, XS; Li, XH; Kong, FL; Jiang, X.; Ma, ZW; Wang, JZ; Chen, C.; Zhou, XW Die Aktivierung von Sirtuin 1 schwächt zerebrale ventrikuläre Streptozotocin-induzierte Tau-Hyperphosphorylierung und kognitive Verletzungen im Hippocampi von Ratten. Alter 2014, 36, 613–623. [CrossRef] [PubMed]
88. Franceschi, C.; Capri, M.; Monti, D.; Giunta, S.; Olivieri, F.; Sevini, F.; Panourgia, MP; Invidia, L.; Celani, L.; Scurti, M.; et al. Entzündungshemmend und entzündungshemmend: Aus Studien am Menschen entstand eine systemische Perspektive auf Alterung und Langlebigkeit. Mech. Aging Dev. 2007, 128, 92–105. [CrossRef] [PubMed]
89. Moussa, C.; Hebron, M.; Huang, X.; Ahn, J.; Rissman, RA; Aisen, PS; Turner, RS Resveratrol reguliert Neuroentzündungen und induziert adaptive Immunität bei der Alzheimer-Krankheit. J. Neuroinflamm. 2017, 14, 1. [CrossRef] [PubMed]
90. Clavijo, PE; Frauwirth, KA Anerge CD8 plus T-Lymphozyten haben eine beeinträchtigte NF-κB-Aktivierung mit Defekten in der p65-Phosphorylierung und -Acetylierung. J. Immunol. 2012, 188, 1213–1221. [CrossRef]
91. Niu, Y.; Na, L.; Feng, R.; Gong, L.; Zhao, Y.; Li, Q.; Li, Y.; Sun, C. Der sekundäre Pflanzenstoff EGCG verlängert die Lebensdauer, indem er Leber- und Nierenfunktionsschäden reduziert und altersbedingte Entzündungen und oxidativen Stress bei gesunden Ratten lindert. Aging Cell 2013, 12, 1041–1049. [CrossRef] [PubMed]
92. Kuptniratsaikul, V.; Thanakhumtorn, S.; Chinswangwatanakul, P.; Wattanamongkonsil, L.; Thamlikitkul, V. Wirksamkeit und Sicherheit von Curcuma-Domestica-Extrakten bei Patienten mit Knie-Arthrose. J. Altern. Komplementärmedizin. 2009, 15, 891–897. [CrossRef]
93. De Araújo, FF; de Paulo Farias, D.; Neri-Numa, IA; Pastore, GM-Polyphenole und ihre Anwendungen: Ein Ansatz in der Lebensmittelchemie und Innovationspotenzial. Lebensmittelchem. 2020, 338, 127535. [CrossRef]
94. Heinz, SA; Henson, DA; Austin, MD; Jin, F.; Nieman, DC Quercetin-Supplementierung und Infektionen der oberen Atemwege: Eine randomisierte klinische Gemeinschaftsstudie. Pharmakol. Res. 2010, 62, 237–242. [CrossRef]
95. Yuan, L.; Han, X.; Li, W.; Ren, D.; Yang, J. Agrar. Lebensmittelchem. 2016, 64, 2682–2689. [CrossRef]
96. Zhang, L.; Wang, X.; Zhang, L.; Virgous, C.; Si, H. Die Kombination von Curcumin und Luteolin hemmt synergistisch TNF-alpha-induzierte Gefäßentzündungen in menschlichen Gefäßzellen und Mäusen. J. Nutr. Biochem. 2019, 73, 108222. [CrossRef] [PubMed]
97. Harman, D. Die biologische Uhr: Die Mitochondrien? Marmelade. Geriatr. Soc. 1972, 20, 145–147. [CrossRef] [PubMed]
98. Linnane, AW; Marzuki, S.; Ozawa, T.; Tanaka, M. Mitochondriale DNA-Mutationen als wichtiger Faktor für Alterung und degenerative Erkrankungen. Lancet 1989, 1, 642–645. [CrossRef]
99. Nenadis, N.; Wang, LF; Tsimidou, M.; Zhang, HY Abschätzung der Abfangaktivität phenolischer Verbindungen mithilfe des ABTS(* plus)-Assays. J. Agrar. Lebensmittelchem. 2004, 52, 4669–4674. [CrossRef]
100. Lu, M.; Cai, YJ; Fang, JG; Zhou, YL; Liu, ZL; Wu, LM Effizienz und Struktur-Aktivitäts-Beziehung der antioxidativen Wirkung von Resveratrol und seinen Analoga. Pharmazie 2002, 57, 474–478. [PubMed]
101. Yokozawa, T.; Chen, CP; Dong, E.; Tanaka, T.; Nonaka, GI; Nishioka, I. Studie über die hemmende Wirkung von Tanninen und Flavonoiden gegen das 1,1-Diphenyl-2-Picrylhydrazyl-Radikal. Biochem. Pharmakol. 1998, 56, 213–222. [CrossRef]
102. Cao, G.; Sofic, E.; Prior, RL Antioxidatives und prooxidatives Verhalten von Flavonoiden: Struktur-Aktivitäts-Beziehungen. Freies Radikal. Biol. Med. 1997, 22, 749–760. [CrossRef]
103. Wolfe, KL; Liu, RH Struktur-Aktivitäts-Beziehungen von Flavonoiden im zellulären Antioxidans-Aktivitätstest. J. Agrar. Lebensmittelchem. 2008, 56, 8404–8411. [CrossRef] [PubMed]
104. Modak, B.; Contreras, ML; Gonzalez-Nilo, F.; Torres, R. Struktur-antioxidative Aktivitätsbeziehungen von Flavonoiden, die aus dem harzigen Exsudat von Heliotropium sinuatum isoliert wurden. Bioorg Med. Chem. Lette. 2005, 15, 309–312. [CrossRef] [PubMed]
105. Kato, A.; Nasu, N.; Takebayashi, K.; Adachi, I.; Minami, Y.; Sanae, F.; Asano, N.; Watson, AA; Nash, RJ Struktur-Aktivitätsbeziehungen von Flavonoiden als potenzielle Inhibitoren der Glykogenphosphorylase. J. Agrar. Lebensmittelchem. 2008, 56, 4469–4473. [CrossRef]
106. Lin, CZ; Zhu, CC; Hu, M.; Wu, AZ; Bairu, ZD; Kangsa, SQ Struktur-Aktivitäts-Beziehungen der antioxidativen Aktivität in vitro über aus Pyrethrum tatsienense isolierte Flavonoide. J. Intercult. Ethnopharmakol. 2014, 3, 123–127. [CrossRef] [PubMed]
107. Asseburg, H.; Schäfer, C.; Müller, M.; Hagl, S.; Pohland, M.; Berressem, D.; Borchiellini, M.; Plank, C.; Eckert, GP Auswirkungen von Traubenschalenextrakt auf altersbedingte mitochondriale Dysfunktion, Gedächtnis und Lebensdauer bei C57BL/6J-Mäusen. Neuromol. Med. 2016, 18, 378–395. [CrossRef]
108. Singh, S.; Das Roy, L.; Giri, S. Curcumin schützt Metronidazol und röntgeninduzierte Zytotoxizität und oxidativen Stress in männlichen Keimzellen bei Mäusen. Prag Med. Rep. 2015, 114, 92–102. [CrossRef]
109. Roy, S.; Sannigrahi, S.; Vaddepalli, RP; Ghosh, B.; Pusp, P. Eine neuartige Kombination aus Methotrexat und Epigallocatechin schwächt die Überexpression entzündungsfördernder Knorpelzytokine ab und moduliert den Antioxidansstatus bei adjuvanten arthritischen Ratten. Entzündung 2015, 35, 1435–1447. [CrossRef]
110. Uygur, R.; Yagmurca, M.; Alkoc, OA; Genc, A.; Songur, A.; Ucok, K.; Ozen, OA Auswirkungen von Quercetin und Fisch-n-3-Fettsäuren auf durch Ethanol verursachte Hodenschäden bei Ratten. Andrologia 2013. [CrossRef]
111. Yang, Y.; Wu, ZZ; Cheng, YL; Lin, W.; Qu, C. Resveratrol schützt vor oxidativen Schäden an retinalen Pigmentepithelzellen, indem es die SOD/MDA-Aktivität moduliert und die Bcl-2-Expression aktiviert. EUR. Rev. Med. Pharmacol Sci. 2019, 23, 378–388. [CrossRef] [PubMed]
112. Zheng, Y.; Liu, Y.; Ge, J.; Wang, X.; Liu, L.; Bu, Z.; Liu, P. Resveratrol schützt menschliche Linsenepithelzellen vor H2O2 -induziertem oxidativem Stress, indem es die Katalase-, SOD-1- und HO-1-Expression erhöht. Mol. Vis. 2010, 16, 1467–1474.
113. Yang, XH; Kleine.; Xue, YB; Zhou, XX; Tang, JH Flavonoide aus epimedium pubertierendem: Extraktion und Mechanismus, antioxidative Kapazität und Auswirkungen auf CAT und GSH-Px von Drosophila melanogaster. Peer J. 2020, 8, e8361. [CrossRef] [PubMed]
114. Sun, S.; Zhao, X.; Zhao, L. [Auswirkungen von Genistein auf NOS-, GSH-Px-Aktivitäten und NO-, GSH- und MDA-Gehalte in menschlichen MCF-Brustkrebszellen]. Wei Sheng Yan Jiu 2004, 33, 468–469. [PubMed]
115. Lorendeau, D.; Dury, L.; Genoux-Bastide, E.; Lecerf-Schmidt, F.; Simoes-Pires, C.; Carrupt, PA; Terreux, R.; Magnard, S.; Di Pietro, A.; Boumendjel, A.; et al. Kollaterale Empfindlichkeit resistenter MRP1-überexprimierender Zellen gegenüber Flavonoiden und Derivaten durch GSH-Ausfluss. Biochem. Pharmakol. 2014, 90, 235–245. [CrossRef]
116. Kobayashi, M.; Yamamoto, M. Molekulare Mechanismen, die den Nrf2-Keap1-Weg der antioxidativen Genregulation aktivieren. Antioxid. Redox-Signal. 2005, 7, 385–394. [CrossRef] [PubMed]
117. Wu, CC; Hsu, MC; Hsieh, CW; Lin, JB; Lai, PH; Wung, BS Hochregulierung der Hämoxygenase-1 durch Epigallocatechin-3-gallat über die Phosphatidylinositol-3-Kinase/Akt- und ERK-Wege. Lebenswissenschaft. 2006, 78, 2889–2897. [CrossRef]
118. Wruck, CJ; Claussen, M.; Fuhrmann, G.; Romer, L.; Schulz, A.; Pufe, T.; Wätzig, V.; Peipp, M.; Herdegen, T.; Gotz, ME Luteolin schützt Ratten-PC12- und C6-Zellen vor MPP-plus-induzierter Toxizität über einen ERK-abhängigen Keap1-Nrf2-ARE-Weg. J. Neuronale Transm. Zus. 2007. [CrossRef]
119. Rushworth, SA; Ogborne, RM; Charalambos, Kalifornien; O'Connell, MA Rolle der Proteinkinase C-Delta bei der durch Curcumin induzierten antioxidativen Antwortelement-vermittelten Genexpression in menschlichen Monozyten. Biochem. Biophys. Res. Komm. 2006, 341, 1007–1016. [CrossRef] [PubMed]
120. Shah, ZA; Li, RC; Ahmad, AS; Kensler, TW; Yamamoto, M.; Biswal, S.; Dore, S. Das Flavanol (-)-Epicatechin verhindert Schlaganfallschäden über den Nrf2/HO1-Weg. J. Cereb Blood Flow Metab 2010, 30, 1951–1961. [CrossRef]
121. Hsieh, TC; Lu, X.; Wang, Z.; Wu, JM Die Induktion der Chinonreduktase NQO1 durch Resveratrol in menschlichen K562-Zellen umfasst das antioxidative Reaktionselement ARE und geht mit der nuklearen Translokation des Transkriptionsfaktors Nrf2 einher. Med. Chem. 2006, 2, 275–285. [CrossRef] [PubMed]
122. Kim, JY; Park, YK; Lee, KP; Lee, SM; Kang, TW; Kim, HJ; Dho, SH; Kim, SY; Kwon, KS Genomweite Profilierung des microRNA-mRNA-Regulationsnetzwerks im Skelettmuskel mit zunehmendem Alter. Alterung 2014, 6, 524–544. [CrossRef]
123. Milenkovic, D.; Deval, C.; Gouranton, E.; Landrier, JF; Scalbert, A.; Morand, C.; Mazur, A. Modulation der miRNA-Expression durch Nahrungspolyphenole bei Mäusen mit ApoE-Mangel: Ein neuer Mechanismus der Wirkung von Polyphenolen. PLoS ONE 2012, 7, e29837. [CrossRef]
124. Gandhy, SU; Kim, K.; Larsen, L.; Rosengren, RJ; Safe, S. Curcumin und synthetische Analoga induzieren reaktive Sauerstoffspezies und verringern die Spezifität von Protein (Sp)-Transkriptionsfaktoren, indem sie auf microRNAs abzielen. BMC Cancer 2012, 12, 564. [CrossRef] [PubMed]
125. Boesch-Saadatmandi, C.; Wagner, AE; Wolffram, S.; Rimbach, G. Wirkung von Quercetin auf die entzündliche Genexpression in der Leber von Mäusen in vivo – Rolle von Redoxfaktor 1, miRNA-122 und miRNA-125b. Pharmakol. Res. 2012, 65, 523–530. [CrossRef] [PubMed]
126. Angkeow, P.; Deshpande, SS; Qi, B.; Liu, YX; Park, YC; Jeon, BH; Ozaki, M.; Irani, K. Redoxfaktor-1: Eine außernukleare Rolle bei der Regulierung von endothelialem oxidativem Stress und Apoptose. Zelltod ist unterschiedlich. 2002, 9, 717–725. [CrossRef]
127. Barzegar, A.; Moosavi-Movahedi, AA Intrazelluläre ROS-Schutzeffizienz und freie Radikale abfangende Aktivität von Curcumin. PLoS ONE 2011, 6, e26012. [CrossRef] [PubMed]
128. Milenkovic, D.; Jude, B.; Morand, C. miRNA als molekulares Ziel von Polyphenolen, die ihren biologischen Wirkungen zugrunde liegen. Freie Radic Biol. Med. 2013, 64, 40–51. [CrossRef]
129. Vina, J.; Borras, C.; Miquel, J. Theorien des Alterns. IUBMB Life 2007, 59, 249–254. [CrossRef] [PubMed]
130. Nyberg, L.; Pudas, S. Erfolgreiches Altern des Gedächtnisses. Annu. Rev. Psychol. 2019, 70, 219–243. [CrossRef]
131. Blagosklonny, MV Alterung: ROS oder TOR. Zellzyklus 2008, 7, 3344–3354. [CrossRef]
132. Harman, D. Altern: Eine Theorie basierend auf der Chemie freier Radikale und Strahlung. J. Gerontol. 1956, 11, 298–300. [CrossRef]
133. Chance, B.; Sies, H.; Boveris, A. Hydroperoxidstoffwechsel in Säugetierorganen. Physiol. Rev. 1979, 59, 527–605. [CrossRef]
134. Chang, TS; Cho, CS; Park, S.; Yu, S.; Kang, SW; Rhee, SG Peroxiredoxin III, eine mitochondrienspezifische Peroxidase, reguliert die apoptotische Signalübertragung durch Mitochondrien. J. Biol. Chem. 2004, 279, 41975–41984. [CrossRef] [PubMed]
135. Dodig, S.; Cepelak, I.; Pavic, I. Kennzeichen von Seneszenz und Altern. Biochem. Med. 2019, 29, 030501. [CrossRef]
136. Herranz, N.; Gil, J. Mechanismen und Funktionen der zellulären Seneszenz. J. Clin. Investieren. 2018, 128, 1238–1246. [CrossRef]
137. Vicencio, JM; Galluzzi, L.; Tajeddine, N.; Ortiz, C.; Criollo, A.; Tasdemir, E.; Morselli, E.; Ben Younes, A.; Maiuri, MC; Lavandero, S.; et al. Seneszenz, Apoptose oder Autophagie? Wenn eine beschädigte Zelle über ihren Weg entscheiden muss – Eine Kurzrezension. Gerontologie 2008, 54, 92–99. [CrossRef] [PubMed]
138. Yanagi, S.; Tsubouchi, H.; Miura, A.; Matsuo, A.; Matsumoto, N.; Nakazato, M. Die Auswirkungen der Zellalterung bei Lungenentzündung und altersbedingten Lungenerkrankungen bei älteren Menschen, die das Risiko von Atemwegsinfektionen erhöhen. Int. J. Mol. Wissenschaft. 2017, 18, 503. [CrossRef]
139. Lawless, C.; Wang, C.; Jurk, D.; Merz, A.; Zglinicki, T.; Passos, JF Quantitative Bewertung von Markern für Zellseneszenz. Exp. Gerontol. 2010, 45, 772–778. [CrossRef] [PubMed]
140. Sone, H.; Kagawa, Y. Die Seneszenz von Pankreas-Betazellen trägt zur Pathogenese von Typ-2-Diabetes bei durch fettreiche Ernährung induzierten diabetischen Mäusen bei. Diabetologia 2005, 48, 58–67. [CrossRef]
141. Fyhrquist, F.; Saijonmaa, O.; Strandberg, T. Die Rolle von Seneszenz und Telomerverkürzung bei Herz-Kreislauf-Erkrankungen. Nat. Rev. Cardiol. 2013, 10, 274–283. [CrossRef]
142. Minamino, T.; Orimo, M.; Shimizu, I.; Kunieda, T.; Yokoyama, M.; Ito, T.; Nojima, A.; Nabetani, A.; Oike, Y.; Matsubara, H.; et al. Eine entscheidende Rolle für Fettgewebe spielt p53 bei der Regulierung der Insulinresistenz. Nat. Med. 2009, 15, 1082–1087. [CrossRef] [PubMed]
143. Unterluggauer, H.; Hampel, B.; Zwerschke, W.; Jansen-Durr, P. Seneszenz-assoziierter Zelltod menschlicher Endothelzellen: Die Rolle von oxidativem Stress. Exp. Gerontol. 2003, 38, 1149–1160. [CrossRef] [PubMed]
144. Joseph, JA; Cutler, RC Die Rolle von oxidativem Stress bei Signaltransduktionsänderungen und Zellverlust im Alter. Ann. New York Acad. Wissenschaft. 1994, 738, 37–43. [CrossRef]
145. Hickson, LJ; Langhi Prata, LGP; Bobart, SA; Evans, TK; Giorgadze, N.; Hashmi, SK; Herrmann, SM; Jensen, MD; Jia, Q.; Jordan, KL; et al. Senolytika reduzieren alternde Zellen beim Menschen: Vorläufiger Bericht aus einer klinischen Studie mit Dasatinib plus Quercetin bei Personen mit diabetischer Nierenerkrankung. EBioMedicine 2019, 47, 446–456. [CrossRef]
146. Justice, JN; Nambiar, AM; Tchkonia, T.; LeBrasseur, NK; Pascual, R.; Hashmi, SK; Prata, L.; Masternak, MM; Krichevsky, SB; Musi, N.; et al. Senolytika bei idiopathischer Lungenfibrose: Ergebnisse einer ersten offenen Pilotstudie am Menschen. EBioMedicine 2019, 40, 554–563. [CrossRef] [PubMed]
147. Menicacci, B.; Cipriani, C.; Margheri, F.; Mocali, A.; Giovannelli, L. Modulation des seneszenzassoziierten entzündlichen Phänotyps in menschlichen Fibroblasten durch Olivenphenole. Int. J. Mol. Wissenschaft. 2017, 18, 2275. [CrossRef] [PubMed]
148. Katsiki, M.; Chondrogianni, N.; Chinou, I.; Rivett, AJ; Gonos, ES Der Olivenbestandteil Oleuropein zeigt in vitro proteasomstimulierende Eigenschaften und verleiht menschlichen embryonalen Fibroblasten eine Verlängerung der Lebensdauer. Verjüngungsres. 2007, 10, 157–172. [CrossRef]
149. Rahimifard, M.; Baeeri, M.; Bahadar, H.; Moini-Nodeh, S.; Khalid, M.; Haghi-Aminjan, H.; Mohammadian, H.; Abdollahi, M. Therapeutische Wirkungen von Gallussäure bei der Regulierung von Seneszenz und Diabetes; eine In-vitro-Studie. Molecules 2020, 25, 5875. [CrossRef]
150. Jung, HJ; Suh, Y. Zirkulierende miRNAs im Alter und bei altersbedingten Krankheiten. J. Genet. Genomics 2014, 41, 465–472. [CrossRef]
151. Smith-Vikos, T.; Slack, FJ MicroRNAs und ihre Rolle beim Altern. J. Cell Sci. 2012, 125, 7–17. [CrossRef] [PubMed]
152. Verma, P.; Augustine, GJ; Ammar, MR; Tashiro, A.; Cohen, SM Eine neuroprotektive Rolle für microRNA miR-1000, vermittelt durch die Begrenzung der Glutamat-Exzitotoxizität. Nat. Neurosci. 2015, 18, 379–385. [CrossRef]
153. Jung, HJ; Lee, KP; Milholland, B.; Shin, YJ; Kang, JS; Kwon, KS; Suh, Y. Umfassende miRNA-Profilierung von Skelettmuskeln und Serum bei induzierter und normaler Muskelatrophie bei Mäusen während des Alterns. J. Gerontol. Ein Biol. Wissenschaft. Med. Wissenschaft. 2017, 72, 1483–1491. [CrossRef] [PubMed]
154. Feng, Q.; Zheng, S.; Zheng, J. Die neue Rolle von microRNAs beim Knochenumbau und ihre therapeutischen Auswirkungen auf Osteoporose. BioSci. Rep. 2018, 38. [CrossRef]
155. Shao, H.; Yang, L.; Wang, L.; Tang, B.; Wang, J.; Li, Q. MicroRNA-34a schützt Myokardzellen vor Ischämie-Reperfusionsschäden, indem es die Autophagie über die Regulierung der TNF-alpha-Expression hemmt. Biochem. Zellbiol. 2018, 96, 349–354. [CrossRef]
156. Kinser, HE; Pincus, Z. MicroRNAs als Modulatoren der Langlebigkeit und des Alterungsprozesses. Summen. Genet. 2020, 139, 291–308. [CrossRef] [PubMed]
157. Gu, H.; Wu, W.; Yuan, B.; Tang, Q.; Guo, D.; Chen, Y.; Xia, Y.; Hu, L.; Chen, D.; Sha, J.; et al. Genistein reguliert miR-20a hoch, um die Spermatogenese zu stören, indem es auf Limk1 abzielt. Oncotarget 2017, 8, 58728–58737. [CrossRef] [PubMed]
158. Milenkovic, D.; Berghe, WV; Morand, C.; Claude, S.; van de Sandt, A.; Gorressen, S.; Monfoulet, LE; Chirumamilla, CS; Declerck, K.; Szic, KSV; et al. Eine systembiologische Netzwerkanalyse von nutri(epi)genomischen Veränderungen in Endothelzellen, die Epicatechin-Metaboliten ausgesetzt sind. Wissenschaft. Rep. 2018, 8, 15487. [CrossRef]
159. Tome-Carneiro, J.; Larrosa, M.; Yanez-Gascon, MJ; Davalos, A.; Gil-Zamorano, J.; Gonzalvez, M.; Garcia-Almagro, FJ; Ruiz Ros, JA; Tomas-Barberan, FA; Espin, JC; et al. Eine einjährige Ergänzung mit einem Traubenextrakt, der Resveratrol enthält, moduliert die Expression entzündungsbedingter microRNAs und Zytokine in mononukleären Zellen des peripheren Blutes von Typ-2-Diabetes und Bluthochdruckpatienten mit koronarer Herzkrankheit. Pharmakol. Res. 2013, 72, 69–82. [CrossRef]
160. Feletou, M. Endothelabhängige Hyperpolarisation und endotheliale Dysfunktion. J. Cardiovasc. Pharmakol. 2016, 67, 373–387. [CrossRef]
161. Soloviev, AI; Kizub, IV Mechanismen der durch ionisierende Strahlung hervorgerufenen Gefäßdysfunktion und mögliche Ziele für deren pharmakologische Korrektur. Biochem. Pharmakol. 2019, 159, 121–139. [CrossRef]
162. Puca, AA; Carrizzo, A.; Ferrario, A.; Villa, F.; Vecchione, C. Endotheliale Stickoxidsynthase, Gefäßintegrität und außergewöhnliche Langlebigkeit des Menschen. Freies Radikal. Res. 2012, 9, 26. [CrossRef]
163. Schulz, E.; Jansen, T.; Wenzel, P.; Daiber, A.; Munzel, T. Stickoxid, Tetrahydrobiopterin, oxidativer Stress und endotheliale Dysfunktion bei Bluthochdruck. Antioxid. Redox-Signal. 2008, 10, 1115–1126. [CrossRef] [PubMed]
164. Schulz, E.; Gori, T.; Munzel, T. Oxidativer Stress und endotheliale Dysfunktion bei Bluthochdruck. Hypertoniker. Res. 2011, 34, 665–673. [CrossRef]
165. Faria, AM; Papadimitriou, A.; Silva, KC; Lopes de Faria, JM; Lopes de Faria, JB Die Entkopplung der endothelialen Stickoxidsynthase wird durch grünen Tee bei experimentellem Diabetes verbessert, indem der Tetrahydrobiopterinspiegel wiederhergestellt wird. Diabetes 2012, 61, 1838–1847. [CrossRef]
166. Landmesser, U.; Dikalov, S.; Preis, SR; McCann, L.; Fukai, T.; Holland, SM; Mitch, WIR; Harrison, DG Die Oxidation von Tetrahydrobiopterin führt bei Bluthochdruck zur Entkopplung der Stickoxidsynthase der Endothelzellen. J. Clin. Investieren. 2003, 111, 1201–1209. [CrossRef]
167. Stoclet, JC; Chataigneau, T.; Ndiaye, M.; Eiche, MH; El Bedoui, J.; Chataigneau, M.; Schini-Kerth, VB Gefäßschutz durch diätetische Polyphenole. EUR. J. Pharmacol. 2004, 500, 299–313. [CrossRef]
168. Grassi, D.; Necozione, S.; Lippi, C.; Croce, G.; Valeri, L.; Pasqualetti, P.; Desideri, G.; Blumberg, JB; Ferri, C. Kakao senkt den Blutdruck und die Insulinresistenz und verbessert die endothelabhängige Vasodilatation bei Hypertonikern. Hypertonie 2005, 46, 398–405. [CrossRef] [PubMed]
169. Lopez-Sepulveda, R.; Jimenez, R.; Romero, M.; Zarzuelo, MJ; Sanchez, M.; Gomez-Guzman, M.; Vargas, F.; O'Valle, F.; Zarzuelo, A.; Perez-Vizcaino, F.; et al. Weinpolyphenole verbessern die Endothelfunktion in großen Gefäßen weiblicher, spontan hypertensiver Ratten. Hypertonie 2008, 51, 1088–1095. [CrossRef]
170. Xu, JW; Ikeda, K.; Yamori, Y. Hochregulierung der endothelialen Stickoxidsynthase durch Cyanidin-3-glucosid, ein typisches Anthocyaninpigment. Hypertonie 2004, 44, 217–222. [CrossRef]
171. Wu, T.-W.; Zeng, L.-H.; Wu, J.; Fung, K.-P. Morin: Ein Holzpigment, das drei Arten menschlicher Zellen im Herz-Kreislauf-System vor Schäden durch Oxyradikale schützt. Biochem. Pharmakol. 1994, 47, 1099–1103. [CrossRef]
172. Taguchi, K.; Tano, I.; Kaneko, N.; Matsumoto, T.; Kobayashi, T. Die pflanzlichen Polyphenole Morin und Quercetin retten die Stickoxidproduktion in der Aorta diabetischer Mäuse über verschiedene Wege. Biomed. Pharmakotherapeut. 2020, 129. [CrossRef]
173. Taguchi, K.; Hida, M.; Hasegawa, M.; Matsumoto, T.; Kobayashi, T. Diätetisches Polyphenol-Morin rettet die endotheliale Dysfunktion in einem diabetischen Mausmodell durch Aktivierung des Akt/eNOS-Signalwegs. Mol. Nutr. Lebensmittelres. 2016, 60, 580–588. [CrossRef] [PubMed]
174. Baur, JA; Sinclair, DA Therapeutisches Potenzial von Resveratrol: Der In-vivo-Beweis. Nat. Rev. Drug Discov. 2006, 5, 493–506. [CrossRef]
175. Bradamante, S.; Barenghi, L.; Villa, A. Herz-Kreislauf-Schutzwirkung von Resveratrol. Herz-Kreislauf. Drug Rev. 2004, 22, 169–188. [CrossRef] [PubMed]
176. Wallerath, T.; Deckert, G.; Ternes, T.; Anderson, H.; Li, H.; Witte, K.; Forstermann, U. Resveratrol, ein in Rotwein enthaltenes polyphenolisches Phytoalexin, steigert die Expression und Aktivität der endothelialen Stickoxidsynthase. Auflage 2002, 106, 1652–1658. [CrossRef] [PubMed]
177. Song, J.; Hey.; Luo, C.; Feng, B.; Ran, F.; Xu, H.; Ci, Z.; Xu, R.; Han, L.; Zhang, D. Neue Fortschritte in der Pharmakologie von Protocatechinsäure: Eine Verbindung, die häufig und in großen Mengen in täglichen Nahrungsmitteln und Kräutern eingenommen wird. Pharmakol. Res. 2020, 161, 105109. [CrossRef]
178. Masodsai, K.; Lin, YY; Chaunchaiyakul, R.; Su, CT; Lee, SD; Yang, AL: Die zwölfwöchige Verabreichung von Protokatechinsäure verbessert die durch den Insulin-induzierten und den Insulin-ähnlichen Wachstumsfaktor-1- induzierte Gefäßentspannung und antioxidative Aktivitäten bei alternden, spontan hypertensiven Ratten. Nährstoffe 2019, 11, 699. [CrossRef] [PubMed]
179. Castañeda-Ovando, A.; Pacheco-Hernández, MdL; Páez-Hernández, ME; Rodríguez, JA; Galán-Vidal, CA Chemische Studien zu Anthocyanen: Eine Übersicht. Lebensmittelchem. 2009, 113, 859–871. [CrossRef]
180. Rocha, BS; Gago, B.; Barbosa, RM; Laranjinha, J. Nahrungspolyphenole erzeugen Stickoxid aus Nitrit im Magen und bewirken eine Entspannung der glatten Muskulatur. Toxicology 2009, 265, 41–48. [CrossRef]
181. Santos-Parker, JR; Strahler, TR; Bassett, CJ; Bispham, Neuseeland; Chonchol, MB; Seals, DR Die Curcumin-Supplementierung verbessert die vaskuläre Endothelfunktion bei gesunden Erwachsenen mittleren und höheren Alters, indem sie die Bioverfügbarkeit von Stickoxid erhöht und oxidativen Stress reduziert. Altern 2017, 9, 187–208. [CrossRef]
182. Iside, C.; Scafuro, M.; Nebbioso, A.; Altucci, L. SIRT1-Aktivierung durch natürliche Phytochemikalien: Ein Überblick. Vorderseite. Pharmakol. 2020, 11, 1225. [CrossRef]
183. Li, D.; Cui, Y.; Wang, X.; Liu, F.; Li, Phytother. Res. 2020. [CrossRef] [PubMed]
184. Csiszar, A.; Labinskyy, N.; Pinto, JT; Ballabh, P.; Zhang, H.; Losonczy, G.; Pearson, K.; Cabo, Rd; Pacher, P.; Zhang, C.; et al. Resveratrol induziert die mitochondriale Biogenese in Endothelzellen. Bin. J. Physiol. Herzkreislauf. Physiol. 2009, 297, H13–H20. [CrossRef] [PubMed]
185. Mann, AWC; Li, H.; Xia, N. Die Rolle von Sirtuin1 bei der Regulierung der Endothelfunktion, der arteriellen Umgestaltung und der Gefäßalterung. Vorderseite. Physiol. 2019, 10. [CrossRef] [PubMed]
186. Lagouge, M.; Argmann, C.; Gerhart-Hines, Z.; Meziane, H.; Lerin, C.; Daussin, F.; Messadeq, N.; Milne, J.; Lambert, P.; Elliott, P.; et al. Resveratrol verbessert die Mitochondrienfunktion und schützt vor Stoffwechselerkrankungen durch die Aktivierung von SIRT1 und PGC-1alpha. Zelle 2006, 127, 1109–1122. [CrossRef] [PubMed]
187. Zang, M.; Xu, S.; Maitland-Toolan, KA; Zuccollo, A.; Hou, X.; Jiang, B.; Wierzbicki, M.; Verbeuren, TJ; Cohen, RA Polyphenole stimulieren AMP-aktivierte Proteinkinase, senken Lipide und hemmen beschleunigte Atherosklerose bei Mäusen mit diabetischem LDL-Rezeptor-Mangel. Diabetes 2006, 55, 2180–2191. [CrossRef] [PubMed]
188. Sugiyama, M.; Kawahara-Miki, R.; Kawana, H.; Shirasuna, K.; Kuwayama, T.; Iwata, H. Resveratrol-induzierte mitochondriale Synthese und Autophagie in Eizellen, die aus frühen Antralfollikeln alter Kühe stammen. J. Reproduktion. Entwickler 2015, 61, 251–259. [CrossRef]
189. Visioli, F.; Rodríguez-Pérez, M.; Gómez-Torres, Ó.; Pintado-Losa, C.; Burgos-Ramos, E. Hydroxytyrosol verbessert die mitochondriale Energie eines zellulären Modells der Alzheimer-Krankheit. Nutr. Neurosci. 2020, 1–11. [CrossRef] [PubMed]
190. Wu, S.; Tian, L. Verschiedene Phytochemikalien und Bioaktivitäten in der alten Frucht und dem modernen funktionellen Lebensmittel Granatapfel (Punica granatum). Molecules 2017, 22, 1606. [CrossRef] [PubMed]
191. Tresserra-Rimbau, A.; Medina-Remon, A.; Perez-Jimenez, J.; Martinez-Gonzalez, MA; Covas, MI; Corella, D.; Salas-Salvado, J.; Gomez-Gracia, E.; Lapetra, J.; Aros, F.; et al. Nahrungsaufnahme und Hauptnahrungsquellen von Polyphenolen in einer spanischen Bevölkerung mit hohem kardiovaskulärem Risiko: Die PREDIMED-Studie. Nutr. Metab. Herz-Kreislauf. Dis. 2013, 23, 953–959. [CrossRef]
192. Schaffer, S.; Asseburg, H.; Kuntz, S.; Müller, WE; Eckert, GP Auswirkungen von Polyphenolen auf die Gehirnalterung und die Alzheimer-Krankheit: Fokus auf Mitochondrien. Mol. Neurobiol. 2012, 46, 161–178. [CrossRef] [PubMed]
193. Rein, MJ; Renouf, M.; Cruz-Hernandez, C.; Actis-Goretta, L.; Thakkar, SK; da Silva Pinto, M. Bioverfügbarkeit bioaktiver Lebensmittelverbindungen: Eine herausfordernde Reise zur Biowirksamkeit. Br. J. Clin. Pharmakol. 2013, 75, 588–602. [CrossRef] [PubMed]
194. Zhang, L.; Virgous, C.; Si, H. Synergistische entzündungshemmende Wirkungen und Mechanismen kombinierter sekundärer Pflanzenstoffe. J. Nutr. Biochem. 2019, 69, 19–30. [CrossRef] [PubMed]
【Für weitere Informationen:george.deng@wecistanche.com / WhatApp:8613632399501】