TEIL 2 Echinacosid induziert apoptotischen Krebszelltod durch Hemmung des Nukleotidpool-Desinfektionsenzyms MTH1
Mar 10, 2022
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Diskussion
Echinacosidist eine natürliche Verbindung, die aus den Heilpflanzen Cistanche und Echinacea isoliert wird.51,52 Es wurde gezeigt, dass sie vielseitige gesundheitsfördernde und krankheitsvorbeugende Eigenschaften besitzt, darunter neuraler Schutz, Leberschutz, Entzündungshemmer, Antimüdigkeit, Antiseneszenz, Antidiabetes und Antitumoraktivitäten. 53–58 Die bekannteste und anerkannteste Bioaktivität vonEchinacosidist seine antioxidative und ROS-abfangende Wirkung;44,45 es wurde jedoch auch gezeigt, dass es oxidative DNA-Schäden in Krebszellen verursacht, wobei die zugrunde liegenden Mechanismen unklar bleiben.58 In der vorliegenden Studie wurde ein Hochdurchsatz-in-vitro-Screening-Assay verwendet , wir haben das gefundenEchinacosidwirksam die MTH1--katalysierte enzymatische Reaktion gehemmt. Eine Erhöhung der Menge des MTH1-Enzyms verringerte den Grad der Hemmung, während eine Erhöhung der Menge der anorganischen Pyrophosphatase die Hemmung nicht beeinflusste, was darauf hinweistEchinacosidhemmte spezifisch die Aktivität von MTH1 im In-vitro-Assay. Behandlung verschiedener menschlicher Krebszelllinien mitEchinacosidverursachte eine signifikante Erhöhung des zellulären 8-oxoG-Spiegels, ohne den zellulären ROS-Spiegel zu verändern. Angesichts der Tatsache, dass Echinacosid selbst ein starkes Antioxidans ist, deuten diese Ergebnisse darauf hin, dass der erhöhte intrazelluläre 8-oxoG-Spiegel wahrscheinlich auf die Hemmung von zellulärem MTH1 durch zurückzuführen istEchinacosid.Die Behandlung mit Echinacosid verursachte umfangreiche DNA-Schäden und eine signifikante Hochregulierung des G1/S-CDK-Blockers p21, gefolgt von einem deutlichen apoptotischen Zelltod und einer Unterdrückung der Zellproliferation, insbesondere bei Krebs, aber nicht bei den Nicht-Krebszellen. Weiterhin kann ein deutlicher Verlust des mitochondrialen Membranpotentials nach


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EchinacosidBehandlung wies auf die Aktivierung des intrinsischen Apoptosewegs hin.Echinacosid-induzierte DNA-Schäden und Hochregulierung von p21 wurden innerhalb von 5 Stunden nach der Behandlung beobachtet, während Apoptose von Krebszellen, Störung des mitochondrialen Membranpotentials und Wachstumshemmung 12 Stunden nach Beginn der Behandlung beobachtet wurden. Diese Daten unterstützen, dass die Apoptose und Wachstumshemmung von Krebszellen die Ergebnisse der umfangreichen DNA-Schäden waren, die durch die Hemmung von MTH1 verursacht wurden. Jüngste Studien haben gezeigt, dass eine Verringerung der Größe des zellulären dNTP-Pools auch zu DNA-Replikationsstress und DNA-Schäden führen kannEchinacosid-behandelten Krebszellen spricht gegen die Möglichkeit einer reduzierten dNTP-Poolgröße, und Bcl2, ein Protein, das die dNTP-Poolgröße reduziert,60 war signifikant verringertEchinacosid-behandelten SW480-Krebszellen;58 darüber hinaus zeigten unsere Daten dies eindeutigEchinacosiddirekt MTH1 gehemmt, das zumindest teilweise für die durch Echinacosid verursachten DNA-Schäden und zellulären Wirkungen verantwortlich sein könnte. Der dNTP-Pool ist ein kritisches Ziel von ROS, und oxidierte dNTPs sind wichtige Quellen für oxidative DNA-Schäden.3,10 Reparatur-assoziierte DNA-SSBs und DSBs können zu zellulärer Seneszenz und Apoptose führen, die mit dem Altern und altersbedingten Krankheiten in Verbindung gebracht werden61 und auch als Barriere für die Tumorentstehung dienen. Daher wird angenommen, dass die Reduzierung von ROS-induzierten DNA-Schäden durch Antioxidantien der allgemeinen Gesundheit zuträglich ist. Mehrere neuere Studien haben jedoch gezeigt, dass Antioxidantien auch die Entwicklung einiger Krebsarten fördern könnten.62–64Krebszellen erzeugen viel höhere ROS und sind für Überleben und Vermehrung entscheidend von der effizienten Eliminierung oxidierter Nukleotide abhängig.3,30,32, 33 Die Überexpression von MTH1 ist die wichtigste Strategie, die Krebszellen verwenden, um mit der tödlichen Belastung durch oxidierte dNTPs fertig zu werden.23,24,26–28 Die Hemmung von MTH1 tötete effizient Krebszellen,3,29,30,32,33 und zielte gleichzeitig auf MTH1 ab normale Zellen hatten keinen Einfluss auf das Überleben,32,33 und MTH1-Knockout-Mäuse waren weitgehend normal.65 Konsequenterweise zeigten wir auch, dass die Behandlung mit Echinacosid Apoptose induzierte und die Zellproliferation speziell bei Krebs, aber nicht bei Nicht-Krebszellen unterdrückte. Im Gegensatz zu aktuellen Chemotherapien und Strahlentherapien, die unterschiedslos auf normale und Tumorzellen abzielen, tötet die Hemmung von MTH1 Krebszellen hochselektiv durch Verwendung der reichlich vorhandenen oxidierten Nukleotidvorläufer in Tumoren. Andererseits haben Therapien, die in einem personalisierten Ansatz auf Genotypunterschiede zwischen normalen und spezifischen Krebsarten abzielen, beeindruckende Ergebnisse gezeigt, sind aber auch durch den hohen Grad an Intratumor-Heterogenität und hohen Mutationsraten in Krebszellen begrenzt. Im Gegensatz dazu zielt die Hemmung von MTH1 auf einen Phänotyp ab, der die meisten Krebszellen von normalen Zellen unterscheidet, und stellt daher eine neuartige Antikrebsstrategie dar, die nicht durch genetische Anpassungen begrenzt ist. Interessanterweise wurden niedermolekulare Antagonisten des Antiapoptose-Proteins Bcl266,67 und Agonisten des Proapoptose-Proteins Bax68 entwickelt, die sich als vielversprechende neue Antikrebsmittel erwiesen haben. Angesichts ihrer komplementären Wirkmechanismen würde die Kombination von MTH1-Inhibitoren und Apoptose-fördernden Chemikalien eine aufregende neue Generation von Krebsmedikamenten schaffen.

CistancheEchinacosidVorteile
Zum ersten Mal haben wir eine neue Funktion für demonstriertEchinacosidals natürlicher Wirkstoff gegen Krebs. Beim In-vitro-AssayEchinacosidhemmte MTH1 mit einem IC50 von 7,01 μM. Dieser IC50-Wert ist höher als der der bisher berichteten MTH1-Inhibitoren.32,33,69 Unter Verwendung von (S)-Crizotinib als Positivkontrolle zeigten wir, dass unser Assay siebenmal weniger empfindlich ist als der von Huber et al.33 , ist der tatsächliche IC50-Wert von Echinacosid wahrscheinlich niedriger. Dennoch entfaltet es als Therapeutikum die Wirksamkeit des NatürlichenEchinacosidMolekül muss wahrscheinlich verbessert werden. Als Naturprodukt, das seit langem als pflanzliches Arzneimittel verwendet wird, könnte Echinacosid als gutes chemisches Gerüst für die Entwicklung effizienter und wahrscheinlich sicherer MTH1-Hemmer dienen.37,70 Angesichts der Tatsache, dass Naturprodukte eine reiche Quelle neuartiger chemischer Gerüste sind Für ein rationales strukturbasiertes Wirkstoffdesign70 werden ähnliche Ansätze wie die hier verwendeten zusammen mit dem großen Interesse an Naturstoffen für die Wirkstoffforschung nützlich sein, um zielgerichtete, wirksame und sichere neue Wirkstoffe zu finden.

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Wissen
Diese Studie wurde von einem Startup-Fonds der Universität Jilin unterstützt.
Offenlegung
Die Autoren melden keine Interessenkonflikte in dieser Arbeit

ZistancheEchinacosid: Anti-Krebs-SchutzOrgan
Verweise
1. Topal MD, Baker MS. DNA-Vorläufer-Pool: ein signifikantes Ziel für N-Methyl-N-Nitrosoharnstoff in C3H/10T1/2-Klon-8-Zellen. Proc Natl Acad Sci US A. 1982;79(7):2211–2215.2. J. Ichikawa, D. Tsuchimoto, S. Oka et al. Die Oxidation von mitochondrialen Desoxynukleotid-Pools durch Exposition gegenüber Natriumnitroprussid induziert den Zelltod. DNA-Reparatur (Amst). 2008;7(3):418–430.3. Rai P, Onder TT, Young JJ, et al. Die kontinuierliche Eliminierung von oxidierten Nukleotiden ist notwendig, um ein schnelles Einsetzen der zellulären Seneszenz zu verhindern. Proc Natl Acad Sci US A. 2009;106(1):169–174.4. Katafuchi A, Nohmi T. DNA-Polymerasen, die am Einbau oxidierter Nukleotide in DNA beteiligt sind: ihre Effizienz und Präferenz für Template-Basen. Mutat-Res. 2010;703(1):24–31.5. Freudenthal BD, Bart WA, Perera L, et al. Aufdecken der Polymerase-induzierten Zytotoxizität eines oxidierten Nukleotids. Natur. 2015;517(7536):635–639.6. Dizdaroglu M. Oxidativ induzierter DNA-Schaden und seine Reparatur bei Krebs. Mutat Res Rev. Mutat Res. 2015;763:212–245.7. Nakabeppu Y. Zelluläre Konzentrationen von 8--Oxoguanin entweder in der DNA oder im Nukleotidpool spielen eine entscheidende Rolle bei der Karzinogenese und dem Überleben von Krebszellen. Int. J. Mol. Sci. 2014;15(7):12543–12557.8. van Loon B, Markkanen E, Hubscher U. Sauerstoff als Freund und Feind: Wie man das Mutationspotential von 8- Oxo-Guanin bekämpft. DNA-Reparatur (Amst). 2010;9(6):604–616.9. Pfeifer GP, Besaratinia A. Mutationsspektren von menschlichem Krebs. Hum Genet. 2009;125(5–6):493–506.10. Russo MT, Blasi MF, Chiera F, et al. Der oxidierte Desoxynucleosid-Triphosphat-Pool trägt wesentlich zur genetischen Instabilität in Mismatch-Reparatur-defizienten Zellen bei. Mol Cell Biol. 2004;24(1):465–474.11. Kamiya H. Mutagenität von oxidierten DNA-Vorläufern in lebenden Zellen: Rollen der Nukleotidpool-Reinigung und DNA-Reparaturenzyme und DNA-Polymerasen für die Transläsionssynthese. Mutat-Res. 2010;703(1):32–36.12. Nagy GN, Ebenen I, Vértessy BG. Vorbeugende DNA-Reparatur durch Säuberung des zellulären (Desoxy-)Nukleosid-Triphosphat-Pools. FEBS J. 2014;281(18):4207–4223.13. McLennan AG. Die Nudix-Hydrolase-Superfamilie. Cell Mol Life Sci. 2006;63(2):123–143.14. Fujikawa K, Kamiya H, Yakushiji H, Nakabeppu Y, Kasai H. Humanes MTH1-Protein hydrolysiert das oxidierte Ribonukleotid, 2--Hydroxy-ATP. Nukleinsäuren res. 2001;29(2):449–454.15. Y. Nakabeppu, S. Oka, Z. Sheng, D. Tsuchimoto, K. Sakumi. Programmierter Zelltod, ausgelöst durch Schäden im Nukleotidpool, und seine Verhinderung durch das MutT-Homolog-1 (MTH1) mit oxidierter Purinnukleosidtriphosphatase. Mutat-Res. 2010;703(1):51–58.16. Dizdaroglu M. Oxidativ induzierter DNA-Schaden: Mechanismen, Reparatur und Krankheit. Krebs Lett. 2012;327(1–2):26–47.17. Brücke G, Rashid S, Martin SA. DNA-Mismatch-Reparatur und oxidativer DNA-Schaden: Auswirkungen auf die Krebsbiologie und -behandlung. Krebs (Basel). 2014;6(3):1597–1614.18. Caldecott KW. Reparatur von Einzelstrangbrüchen und genetische Erkrankungen. Nat. Rev. Genet. 2008;9(8):619–631.19. Klement K, Goodarzi AA. DNA-Doppelstrangbruchreaktionen und Chromatinveränderungen innerhalb der alternden Zelle. Exp-Zellenres. 2014;329(1):42–52.20. Schulze A, Harris AL. Wie der Krebsstoffwechsel auf Proliferation eingestellt und anfällig für Störungen ist. Natur. 2012;491(7424):364–373.21. Cairns RA, Harris IS, Mak TW. Regulation des Stoffwechsels von Krebszellen. Nat Rev Krebs. 2011;11(2):85–95.22. Rai P. Human Mut T Homolog 1 (MTH1): ein Hindernis für die tumorunterdrückenden Wirkungen von onkogenem Ras-induziertem ROS. Kleine GTPasen. 2012;3(2):120–125.23. Kennedy CH, Cueto R, Belinsky SA, Lechner JF, Pryor WA. Überexpression von hMTH1-mRNA: ein molekularer Marker für oxidativen Stress in Lungenkrebszellen. FEBS Lett. 1998;429:17–20.24. T. Lida, A. Furuta, M. Kawashima, J. Nishida, Y. Nakabeppu, T. Iwaki. Neuroonk. 2001;3:73–81.25. Coskun E., Jaruga P., Jemth AS, et al. Die Abhängigkeit von MTH1-Protein führt zu einer intensiven Expression in menschlichem Brustkrebsgewebe, wie durch Flüssigkeitschromatographie-Isotopenverdünnungs-Tandem-Massenspektrometrie gemessen wurde. DNA-Reparatur (Amst). 2015;33:101–110.26. Tudek B, Winczura A, Janik J, Siomek A, Foksinski M, Olinski R. Beteiligung von oxidativ geschädigter DNA und Reparatur bei der Krebsentwicklung und Alterung. Am J Transl. Res. 2010;2(3):254–284.27. Spina E, Arczewska KD, Jackowski D, et al. Beitrag von hMTH1 zur Aufrechterhaltung des 8--Oxoguaninspiegels in der Lungen-DNA von Patienten mit nicht-kleinzelligem Lungenkrebs. J National Cancer Inst. 2005;97(5):384–395.
28. Kennedy CH, Pass HI, Mitchell JB. Expression von humanem MutT-Homolog (hMTH1)-Protein in primären nicht-kleinzelligen Lungenkarzinomen und histologisch normalem umgebendem Gewebe. Freies Radikal Biol Med. 2003;34(11):1447–1457.29. Rai P, Young JJ, Burton DG, Giribaldi MG, Onder TT, Weinberg RA. Die verstärkte Eliminierung von oxidierten Guaninnukleotiden hemmt onkogene Ras-induzierte DNA-Schäden und vorzeitige Seneszenz. Onkogen. 2011;30(12):1489–1496.30. K. Sakumi, Y. Tominaga, M. Furuichi et al. Ogg1-Knockout-assoziierte Lungentumorgenese und ihre Unterdrückung durch Mth1-Genstörung. Krebsres. 2003;63:902–905.31. Patel A, Burton DG, Halvorsen K, et al. MutT-Homolog 1 (MTH1) unterhält mehrere KRAS-gesteuerte pro-maligne Signalwege. Onkogen. 2015;34(20):2586–2596.32. Gad H., Koolmeister T., Jemth AS, et al. Die MTH1-Hemmung rottet Krebs aus, indem sie die Sanierung des dNTP-Pools verhindert. Natur. 2014;508(7495):215–221.33. Huber KV, Salah E, Radic B, et al. Stereospezifisches Targeting von MTH1 durch (S)-Crizotinib als Antikrebsstrategie. Natur. 2014;508(7495):222–227.34. Giribaldi MG, Munoz A, Halvorsen K, Patel A, Rai P. Die MTH1-Expression ist für eine effektive Transformation durch onkogenes HRAS erforderlich. Oncotarget. 2015;6(13):11519–11529.35. Bauer A, Bronstrup M. Industrielle Naturstoffchemie für die Entdeckung und Entwicklung von Arzneimitteln. Nat Prod Rep. 2014;31(1):35–60.36. Orlova B, Legrand N, Panning J, Dicato M, Diederich M. Entzündungshemmende und Krebsmedikamente aus der Natur. Krebsbehandlung Res. 2014;159:123–143.37. Li JW, Vederas JC. Wirkstoffforschung und Naturprodukte: Ende einer Ära oder endlose Grenzen? Wissenschaft. 2009;325(5937):161–165.38. Liu EH, Qi LW, Wu Q, Peng YB, Li P. Aus Naturprodukten gewonnene Antikrebsmittel. Mini-Rev. Med. Chem. 2009;9(13):1547–1555.39. S. Nobili, D. Lippi, E. Witort et al. Naturstoffe zur Krebsbehandlung und -prävention. Pharmakol. Res. 2009;59(6):365–378.40. Hsiao WL, Liu L. Die Rolle traditioneller chinesischer Kräutermedizin in der Krebstherapie – von der TCM-Theorie zu mechanistischen Erkenntnissen. Planta Med. 2010;76(11):1118–1131.41. Baykov AA, Evtushenko OA, Avaeva SM. Ein Malachitgrün-Verfahren zur Orthophosphatbestimmung und seine Verwendung in einem auf alkalischer Phosphatase basierenden Enzymimmunoassay. Anale Biochem. 1988;171(2):266–270.42. Struthers L, Patel R, Clark J, Thomas S. Direkter Nachweis von 8-Oxodeoxyguanosin und 8-Oxoguanin durch Avidin und seine Analoga. Anale Biochem. 1998;255(1):20–31.43. Sheng Z, Oka S, Tsuchimoto D, et al. 8-Oxoguanin verursacht Neurodegeneration während der MUTYH-vermittelten DNA-Basenexzisionsreparatur. J Clin Invest. 2012;122(12):4344–4361.44. Xiong Q, Kadota S, Tani T, Namba T. Antioxidative Wirkungen von Phenylethanoiden aus Cistanche deserticola. Biol PharmBull. 1996;19(12):1580–1585.45. Hu C, Kitts DD. Studien zur antioxidativen Wirkung von Echinacea-Wurzelextrakt. J Agric FoodChem. 2000;48(5):1466–1472.46. Wallace SS, Murphy DL, Sweasy JB. Basenexzisionsreparatur und Krebs. Krebs Lett. 2012;327(1–2):73–89.47. Caldecott KW. Reparatur von DNA-Einzelstrangbrüchen. Exp-Zellenres. 2014;329(1):2–8.48. Schultz LB, Chehab NH, Malikzay A, Halazonetis TD. p53-Bindungsprotein 1 (53BP1) ist ein früher Teilnehmer an der zellulären Antwort auf DNA-Doppelstrangbrüche. J CellBiol. 2000;151(7):1381–1390.49. Li YY, Wang L, Lu CD. Eine E2F-Stelle in der 5'-Promotorregion trägt zur Serum-abhängigen Hochregulierung des Human-Proliferationszell-Kernantigen-Gens bei. FEBS Lett. 2003;544(1–3):112–118.50. González Besteiro MA, Gottifredi V. Die Gabel und die Kinase: eine DNA-Replikationsgeschichte aus CHK1-Perspektive. Mutat Res Rev. Mutat Res. 2015;763:168–180.51. Wang Y, Hao H, Wang G, et al. Ein Ansatz zur Identifizierung sequentieller Metaboliten eines typischen Phenylethanoidglykosids, Echinacosid, basierend auf Flüssigchromatographie-Ionenfallen-Flugzeit-Massenspektrometrie-Analyse. Talanta. 2009;80(2):572–580.52. Hudson JB. Anwendungen der Phytomedizin Echinacea purpurea (Sonnenhut) bei Infektionskrankheiten. J Biomed Biotechnol. 2012;2012:769896.53. Mulani SK, Guh JH, Mong KK. Eine allgemeine Synthesestrategie und die Antiproliferationseigenschaften von Prostatakrebszelllinien für natürliche Phenylethanoidglykoside. Org. Biomol. Chem. 2014;12(18):2926–2937.54. Kuo YY, Jim WT, Su LC, et al. Kaffeesäurephenethylester ist ein potenzielles Therapeutikum für Mundkrebs. Int. J. Mol. Sci. 2015;16(5):10748–10766.55. Li X, Gou C, Yang H, Qiu J, Gu T, Wen T. Echinacosid verbessert D-Galactosamin plus Lipopolysaccharid-induzierte akute Leberschädigung bei Mäusen durch Hemmung von Apoptose und Entzündung. Scand J Gastroen terol. 2014;49(8):993–1000.56. Gai XY, Tang F, Ma J, et al. Antiproliferative Wirkung von Echinacosid auf glatte Muskelzellen der Pulmonalarterie der Ratte unter Hypoxie. J. Pharmacol. Sci. 2014;126(2):155–163.57. Zhu M, Lu C, Li W. Eine vorübergehende Exposition gegenüber Echinacosid reicht aus, um die Trk-Signalübertragung zu aktivieren und neuronale Zellen vor Rotenon zu schützen. J Neurochem. 2013;124(4):571–580.58. Dong L, Yu D, Wu N, et al. Echinacosid induziert Apoptose in menschlichen SW480-Darmkrebszellen durch Induktion von oxidativen DNA-Schäden. Int. J. Mol. Sci. 2015;16(7):14655–14668.59. Bester AC, Roniger M., Oren YS, et al. Nukleotidmangel fördert die genomische Instabilität in frühen Stadien der Krebsentwicklung. Zelle. 2011;145(3):435–446.60. Xie M, Yen Y, Owonikoko TK, et al. Bcl2 induziert DNA-Replikationsstress durch Hemmung der Ribonukleotidreduktase. Krebsres. 2014;74(1):212–223.61. Ventura I, Russo MT, De Luca G, Bignami M. Oxidierte Purinnukleotide, Genominstabilität und Neurodegeneration. Mutat-Res. 2010;703(1):59–65.62. DeNicola GM, Karreth FA, Humpton TJ, et al. Die Onkogen-induzierte Nrf2-Transkription fördert die ROS-Entgiftung und Tumorentstehung. Natur. 2011;475(7354):106–109.63. Santos MA, Faryabi RB, Ergen AV, et al. DNA-Schäden-induzierte Differenzierung von Leukämiezellen als Anti-Krebs-Barriere. Natur. 2014;514(7520):107–111.64. Sayin VI, Ibrahim MX, Larsson E, Nilsson JA, Lindahl P, Bergo MO. Antioxidantien beschleunigen das Fortschreiten von Lungenkrebs bei Mäusen. Wissenschaftliche Transl. Med. 2014;6(221):221ra215.65. Egashira A., Yamauchi K., Yoshiyama K., et al. Mutationsspezifität von Mäusen mit defekten MTH1- und/oder MSH2-Genen. DNA-Reparatur (Amst). 2002;1(11):881–893.66. Vaillant F., Merino D., Lee L., et al. Targeting von BCL-2 mit dem BH3-Mimetikum ABT-199 bei Östrogenrezeptor-positivem Brustkrebs. Krebszelle. 2013;24(1):120–129.67. Han B, Park D, Li R, et al. Kleinmolekularer Bcl2-BH4-Antagonist für die Lungenkrebstherapie. Krebszelle. 2015;27(6):852–863.68. Xin M, Li R, Xie M, et al. Niedermolekulare Bax-Agonisten für die Krebstherapie. Nat Commun. 2014;5:4935.69. Streib M, Kraling K, Richter K, Xie X, Steuber H, Meggers E. Ein metallorganischer Inhibitor für das menschliche Reparaturenzym 7, 8-Dihydro-8-desoxyguanosintriphosphatase. Angew. Chem. Int. Ed. Engl. 2014;53(1):305–309.70. Szychowski J, Truchon JF, Bennani YL. Naturstoffe in der Medizin: Transformationsergebnis der synthetischen Chemie. J MedChem. 2014;57(22):9292–9308.OncoTargets and Therapy 2015:8 Reichen Sie Ihr Manuskript ein|www.dovepress.comDovepress






