Forschung über den besten Weg zur Einnahme von Cistanche-Cistanche-Extrakt, Gesundheitsversorgung, Cistanche-Nahrung

Autor:LI Yang, QIN Yadi, BUBIAJIAER Hayilati, YAO Jun, YUAN Jie, SIE Lin

(1. Fakultät für Pharmazie, Medizinische Universität Xinjiang, Urumqi 830011;2. Xinjiang Second Medical College, Klamayi 834000;3. Hotan Dichen Pharmaceuticas & Biotech Co., Ltd., Hotan 848000）

Abstrakt:

Ziel: Etablierung einer Methode zur Identifizierung und Bestimmung von vier Phenylethanolglykosiden (Echinacosid, Tubulosid A, Acteosid, Isoacteosid) in Cistanche-Stücken, ihren Extrakten und verwandten gesunden Lebensmitteln durch TLC und QAMS.

Methode:

（1）DC: Vier Phenylethanolglycoside wurden durch DC mit Polyamidfilm als stationärer Phase und Chloroform-Methanol-Essigsäure-Wasser （1,5∶2∶1∶7） als Entwicklungslösungsmittel identifiziert. Der Fleck wurde unter ultraviolettem Licht bei 365 nm nachgewiesen.

(2) Unter Verwendung von Echinacosid als interner Referenz wurden die relativen Korrekturfaktoren für Tubulosid A, Acetonid und Isoacteosid verwendet, um den Gehalt jeder Komponente zu berechnen. Die Berechnungsergebnisse der QAMS-Methode wurden mit den Werten der externen Standardmethode verglichen.

Ergebnis: Die TLC-Flecken von 4 Phenylethanolglykosiden (Echinacosid, Tubulosid A, Acteosid und Isoacteosid) in Cistanche-Abkochungsstücken, Extrakten und funktionellen Lebensmitteln waren alle klar mit guter Trennung, starkem spezifischen moderaten Rf-Wert. Die Reproduzierbarkeit der relativen Tubulosid A-, Acteosid- und Isoacteosid-Korrekturfaktoren war gut und es gab keinen offensichtlichen Unterschied zwischen den beiden Methoden.

Schlussfolgerung: Die in dieser Studie etablierte Methode ist einfach, genau und reproduzierbar. Es kann eine Referenz für die Qualitätskontrolle von wirksamen Bestandteilen von Cistanche-Abkochungsstücken, Extrakten und funktionellen Lebensmitteln liefern.

Schlüsselwörter:Zistanche; Abkochungsstücke; verwandte Produkte; Phenethylalkoholglykoside;TLC; QAMS

Cistanche deserticola YC Ma. ist ein mehrjähriges parasitäres Kraut der Familie Orobanchaceae. Es wird als Medizin mit trockenen, fleischigen Stielen mit schuppigen Blättern verwendet. Cistanche wurde erstmals in der „Shenlong Materia Medica“ veröffentlicht und als Bestnote gelistet. Es ist süß im Geschmack, warm in der Natur, salzig und gehört zu den Nieren- und Dickdarmmeridianen. Es hat die Wirkung, den Darm und die Abführmittel zu befeuchten, das Nieren-Yang zu beleben und der Essenz und dem Blut zugute zu kommen. Es wird hauptsächlich in Xinjiang, Ningxia, der Inneren Mongolei, Qinghai, Gansu und anderen trockenen Regionen im Nordwesten Chinas produziert. Die chemischen Hauptbestandteile von Cistanche sind Phenylethanoidglykoside, Iridoide, Lignane, Alkaloide, Monoterpene, Zucker, flüchtige Öle und anorganische Spurenelemente. Unter ihnen sind Phenylethanoidglykoside (Phys) eine der wichtigsten pharmakologischen Komponenten, die pharmakologische Aktivitäten wie Antioxidans, Neuroprotektion, antivirale Wirkung, Verbesserung der Immunität, Antiermüdung und Verbesserung des Gedächtnisses und der Immunität aufweisen.

Vorteile von Cistanche-Extrakt:

Cistanche-Extrakt wird aus trockenen, enzyminaktivierten Cistanche-Tabletten hergestellt, die extrahiert und getrennt werden. Es wurde nach Japan, Südkorea, Malaysia und in andere Überseemärkte exportiert und wird häufig in Gesundheitsprodukten, Kosmetika und der pharmazeutischen Industrie eingesetzt. Das Gesundheitsprodukt verarbeitet ausCistanche-Extraktals Rohstoff hat die duale Gesundheitsversorgung Funktionen vonLinderung körperlicher ErmüdungundVerbesserung der Immunität. Gegenwärtig fehlen entsprechende Kontrollstandards für die Qualitätsbewertung von Wirkstoffen aus Cistanche-Extrakt und Gesundheitsprodukten, und es ist schwierig, die Qualität und Sicherheit der Verarbeitung und des Marktverkaufs zu gewährleisten. Echinacea und Verbascoside sind die Indexkomponenten zur Identifizierung und Gehaltsbestimmung unter dem PunktCistanche Tubulosain der Ausgabe 2020 des Chinesischen Arzneibuchs. Zusätzlich,Cistanche Tubulosaenthält auch andere Phenylethanoidglykoside, wie Tuberosin A, Salidrosid, Isoverbasin, Cistancheosid C, Cistancheosid D, Aurirosid, 2′-Acetylverbasin usw.Verschiedene Grade an antioxidativer und neuroprotektiver Wirkung.Es ist schwierig, seine Qualität umfassend und genau zu bewerten, wenn man nur Echinacosid und Verbascosid als Nachweisindikatoren verwendet. In der Literatur wurde berichtet, dass die Gehalte an Ductalosid A und Isaverasid in Cistanche und Cistanche ebenfalls höher waren und {{0}},29 Prozent, 0,21 Prozent, 0 erreichten. 0,06 Prozent bzw. 0,10 Prozent.

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In diesem Artikel wurden die TLC-Identifizierung von 4 Phenylethanoidglykosiden (Echinacosid, Tuberosid A, Verbascosid, Isorrascosid) in Abkochstücken von Cistanche Tubulosa und verwandten Produkten (Extrakte, Gesundheitsprodukte) und Hochleistungsflüssigkeitschromatographie (HPLC) etabliert. Die Gehaltsbestimmungsmethode der Bewertungsmethode (HPLC-QAMS) bietet eine Referenz für die weitere Verbesserung der Qualitätsbewertungsmethode von Cistanche Tubulosa.

1 Material und Methoden zur Auswahl der besten Art der Einnahme von Cistanche

1.1 Instrumente und Reagenzien

Shimadzu LC-20AT Hochleistungsflüssigkeitschromatograph; Shimadzu LC-20AB Hochleistungsflüssigkeitschromatograph; Agilent1260 Hochleistungs-Flüssigkeitschromatograph; Analysenwaage (AB135-S, Mettler Toledo1o Company); KQ-500DE Ultraschallreiniger

(KQ-500DE, Kunshan Ultrasonic Instrument Co., Ltd.); Halbautomatisches Spotting-Instrument (CAMAG, Schweiz).

(1) Im Handel erhältliche Abkochungsstücke von Cistanche (S1, S2: Cistanche deserticola, Ursprung in Alxa, Xinjiang; S3, S4: Cistanche Tunulosa, Ursprung Xinjiang): gekauft vonWecistanche Co. Ltd.; Alkoholextraktion von Enzym-Trockentabletten, S6: Wasserextraktion von Enzym-inaktivierten Trockentabletten, S7: Enzym-inaktivierte Trockentabletten-Alkoholextraktion mit Harz) und Gesundheitsprodukte (S8) werden von Xinjiang Hetian Dichen Biotechnology Co., Ltd. bereitgestellt.

(2) Echinacea-Referenzsubstanz (Chargennummer: S-003-01904003, Reinheit: größer oder gleich 98 Prozent), Tuberosin A (Chargennummer: G-066-11812016, Reinheit: größer oder gleich 98 Prozent). ), Verbascosid (Chargennummer: Größer als oder gleich 98 Prozent) M-011-02103019, Reinheit: Größer als oder gleich 98 Prozent ), Isaverasid (Chargennummer: Y-073-11803024, Reinheit: Größer als oder gleich 98 Prozent): Beijing Yingleike Technology Development Co., Ltd.

(3) Methanol, Acetonitril und Ameisensäure waren chromatographisch rein; Chloroform und Eisessig waren analysenrein; Wasser war ultrareines Wasser;

1.2 Experimentelle Methode

1.2.1 Identifizierung durch Dünnschichtchromatographie

1.2.1.1 Vorbereitung der Testlösung Nehmen Sie das Testpulver (0,5 g Cistanche-Abkochungsstücke, 0,2 g Cistanche-Extrakt, 0,5 g Gesundheitsprodukt), fügen Sie 20 ml hinzu von 50 Prozent Methanol, 15 Minuten mit Ultraschall behandeln und filtrieren.

Das Filtrat wurde auf 2 ml konzentriert, durch eine mikroporöse 0,45-μm-Membran geleitet und als Testlösung verwendet.

1.2.1.2 Herstellung der Referenzsubstanzlösung 10 mg Echinacosid, Vasosid A, Verbascosid und Isorrascosid-Referenzsubstanz genau wiegen, 50 %iges Methanol zum Auflösen hinzufügen und auf ein Volumen von 10 ml verdünnen

Flasche, als Referenzstandard Einzelstandard-Stammlösung. Messen Sie genau etwa 2 ml der Einzelstandard-Stammlösung jeder Referenzsubstanz ab, fügen Sie 5 0 Prozent Methanol in denselben 10-ml-Messkolben hinzu und führen Sie sie als gemischte Referenzlösung durch eine mikroporöse 0,45-μm-Membran.

1.2.1.3 Vorbereitung der negativen Probenlösung Wiegen Sie andere medizinische Materialien außer Cistanche gemäß der Verschreibung des Gesundheitsprodukts und gehen Sie nach der gleichen Methode für die Vorbereitung der Testlösung vor, um die negative Probenlösung herzustellen.

1.2.2 Gehaltsbestimmung durch One-Test-Multiple-Assessment-Methode

1.2.2.1 Chromatographische Bedingungen Säule: INERTSIL ODS-3 (250mm×4.6mm, 5μm); mobile Phase: Acetonitril (A)-0,1-prozentige Ameisensäurelösung (B), Gradientenelution (0 ~ 12 min, 17 % ~ 20 % A; 12 ~ 30 min, 20 % ~ 22 % A 30~35min, 22 Prozent ~17 Prozent A); Detektionswellenlänge: 330 nm; Durchflussrate: 1,0 ml · min-1; Säulentemperatur: 30 Grad; Injektionsvolumen: 10 μl .

1.2.2.2 Herstellung der Referenzsubstanzlösung Jeweils etwa 10 mg Echinacosid-, Tuberosin A-, Verbascosid- und Isorrascosid-Referenzsubstanz nehmen, genau wiegen und mit 50 Prozent in 10-ml-Messkolben geben

Methanol auflösen und bis zur Marke auffüllen, gut schütteln, um die einzelne Standardstammlösung der Referenzsubstanz mit Konzentrationen von 1,008, 1,011, 1,012 bzw. 1,012 mg·mL-1 zu erhalten. Messen Sie genau eine geeignete Menge der Einzelstandard-Stammlösung jeder Referenzsubstanz ab, geben Sie sie in denselben 10-ml-Messkolben, fügen Sie 50 Prozent Methanol bis zur Markierung hinzu, schütteln Sie gut und bereiten Sie eine Mischung mit einer Konzentration von 201,60, 50,55, 101,20 vor , 50,60 ug·mL-1 Die Referenzlösung wurde durch eine mikroporöse Membran mit 0,45 μm geleitet.

1.2.2.3 Herstellung der Testlösung

① Testlösung für Cistanche-Abkochungsstücke: Etwa 1,0 g Cistanche-Abkochungsstückpulver abwiegen (durch ein Sieb Nr. 4 passieren), genau wiegen, genau 25 ml 50-prozentiges Methanol hinzufügen, gut schütteln , wiegen und mit Ultraschall (Leistung 250 W, Frequenz 35 kHz) 40 Minuten lang abkühlen lassen, erneut wiegen, das reduzierte Gewicht mit 50 Prozent Methanol ergänzen, gut schütteln, durch Filterpapier filtern und das Filtrat durch eine mikroporöse Membran mit 0,45 μm passieren lassen .

②Die Lösung von Cistanche-Extrakt zum Testen: Nehmen Sie das Pulver von Cistanche-Extrakt (S5: alkoholextrahierte enzyminaktivierte trockene Flocken, S6: wasserextrahierte enzyminaktivierte trockene Flocken, S7: alkoholextrahierte enzyminaktivierte trockene Flocken mit Harz) ungefähr 0,2 g. Wiegen Sie die Testlösung des Cistanche-Extrakts genau ab und bereiten Sie sie gemäß der Methode unter "①" vor. ③Testlösung für Gesundheitsprodukte: Nehmen Sie 1 0 Gesundheitsprodukte, wiegen Sie sie genau, mahlen Sie sie fein, berechnen Sie das durchschnittliche Tablettengewicht, wiegen Sie 1 Tablette (ca. 0,5 g) genau und bereiten Sie die Gesundheitsprodukte gemäß vor Methode unter "①". Testlösung.

2 Ergebnisse und Analyse der Auswahl der besten Cistanche

1.1 Instrumente und Reagenzien

2.1 Identifizierung durch Dünnschichtchromatographie

Entnehmen Sie gemäß dem Dünnschichtchromatographie-Test (Allgemeine Regel 0502) jeweils 2 μl der Einzelstandardlösung der Referenzsubstanz, der gemischten Referenzsubstanzlösung, der Testlösung und der Negativprobenlösung und richten Sie sie auf dieselbe Polyacrylamidlösung.

Auf der Aminfilmplatte Chloroform-Methanol-Eisessig-Wasser (1,5:2:1:7) als Entwicklungsmittel verwenden, entwickeln, herausnehmen, trocknen und unter ultraviolettem Licht (365 nm) untersuchen. Ergebnisse Die Testsubstanz zeigte an der entsprechenden Position im Chromatogramm der Referenzsubstanz fluoreszierende Flecken der gleichen Farbe, und es gab keine Interferenz, wenn sie negativ war, wie in Abbildung 1 gezeigt.

Abbildung 1 TLC-Chromatogramme von Cistanche-Stücken, Extrakt, Gesundheitsprodukten

Hinweis: Von links nach rechts sind Echinacosid, Tuberosid A, Verbascosid, Isaverasid, gemischte Referenzsubstanz, Abkochungsstücke von Cistanche (S1 ~ S4), Extrakt von Cistanche (S5 ~ S7), Gesundheitsprodukte (S8), negative Gesundheitsproben Produkte (S8)

2.2 Inhaltsbestimmung durch One-Test-Multiple-Assessment-Methode

2.2.1 Spezifitätstest

Jeweils 10 μL der gemischten Referenzlösung und der Testlösung entnehmen und gemäß den chromatographischen Bedingungen unter 1.2.2.1 injizieren und analysieren. Die Auflösung zwischen dem Zielpeak und den benachbarten Komponenten in der Referenzlösung und der Testlösung ist größer als 1,5, und die Spezifität ist gut. , und das Chromatogramm ist in Abbildung 2 dargestellt.

2.2.2 Untersuchung des linearen Zusammenhangs

0,5, 1, 2,5, 5 und 10 ml der gemischten Referenzlösung unter "1.2.1.2" genau entnehmen, in 10-ml-Meßkolben geben, mit 50-prozentigem Methanol bis zur Marke auffüllen und gut schütteln, um eine Reihe konzentrierter Mischungen zu erhalten.

Kombinieren Sie die Referenzlösung, pipettieren Sie jeweils 10 μL genau und injizieren Sie die Proben gemäß den chromatographischen Bedingungen unter "1.2.2.1", um die Peakfläche zu messen. zum

Setzen Sie sich senkrecht hin, zeichnen Sie eine Regressionskurve und berechnen Sie eine lineare Regression. Die Ergebnisse zeigten, dass r alle größer als 0.9993 waren und die vier Phenethylglykoside eine gute lineare Beziehung zur Peakfläche innerhalb des entsprechenden linearen Bereichs zeigten, wie in Tabelle 1 gezeigt.

Abbildung 2 HPLC-Spektrum von Referenzsubstanz und Probensubstanz

1. Echinacosid;2. Tubulosid A;3. Acteosid;4. Isoacteosid

Notiz:

A. Chromatogramm der gemischten Referenzsubstanz;

B. Chromatogramm von Cistanche Docation-Stücken;

C. Chromatogramm von Cistanche-Extrakt;

D. Chromatogramm des Nahrungsergänzungsmittels

Tabelle 1 Ergebnisse der linearen Beziehung von 4 Komponenten

2.2.3 Präzisionstest

1{{10}} μL der gemischten Referenzlösung unter "1.2.1.2" genau pipettieren, injizieren und 6-mal kontinuierlich gemäß den chromatographischen Bedingungen unter "1.2.2.1" messen, Peakfläche aufzeichnen und berechnen seine RSD. Ergebnisse Die RSDs der Peakbereiche von Echinacosid, Tuberosin A, Verbascosid und Isoverascosid waren 0,79 Prozent, 1,24 Prozent, 0,59 Prozent bzw. 0,42 Prozent (n=6), was darauf hinweist, dass die Die Genauigkeit des Instruments war gut.

2.2.4 Wiederholbarkeitstest

Nehmen Sie 6 Kopien derselben Charge von Testpulvern (S3, S6, S8), wiegen Sie sie genau, bereiten Sie die Testlösung gemäß "1.2.1.3" vor, messen Sie gemäß den chromatographischen Bedingungen unter "1.2.2.1" und zeichnen Sie den Peak auf Bereich wurden der Gehalt der 4 Komponenten und ihre RSDs berechnet. Die Ergebnisse sind in Tabelle 2 gezeigt, was anzeigt, dass das Verfahren eine gute Reproduzierbarkeit aufweist.

Tabelle 2 Wiederholungstests

2.2.5 Stabilitätstest

10 μL der Testlösung (S3, S6, S8) genau entnehmen, gemäß den chromatographischen Bedingungen unter "1.2.2.1" messen und Proben bei 0, 2, 4, 6 injizieren, 8, 12 bzw. 24 h für die Messung. Ergebnisse Die RSDs (n=7) der Peakflächen von Echinacosid, Analosid A, Verascosid und Isaveraside in Probe (S3) betrugen 1,28 %, 1,82 %, 1,52 % bzw. 1,56 %. Die RSDs (n=7) der Peakflächen der vier Komponenten in der Probe (S8) betrugen 1,38 Prozent, 1,57 Prozent, 1,73 Prozent bzw. 2,49 Prozent, und die RSDs (n=7) der Peakflächen der vier Komponenten in der Probe (S8) betrugen 1,63 Prozent, 0,92 Prozent, 1,85 Prozent und 2,24 Prozent, was anzeigt, dass die Testlösung innerhalb von 24 Stunden stabil ist.

2.2.6 Erholungstest

9 Pulver des Testprodukts (S3, S6, S8) mit bekanntem Gehalt wiegen, genau wiegen und die Testlösung gemäß dem Verfahren unter "1.2.2.3" herstellen. Fügen Sie proportional eine bestimmte Menge der Referenzlösung der vier Komponenten hinzu, injizieren und messen Sie gemäß den chromatographischen Bedingungen unter "1.2.2.1", notieren Sie die Peakfläche, berechnen Sie die Wiederfindungsrate und ihre RSD, und die Ergebnisse sind in Tabelle 3 aufgeführt .

Tabelle 3 Ergebnisse der Probenwiederfindungsraten（n=3）

2.2.7 Berechnung des relativen Korrekturfaktors

Der relative Korrekturfaktor wird nach der Mehrpunkt-Korrekturmethode nach der Formel fi/s=fi/fs=(Wi×AS)/(WS×Ai) berechnet, wobei fi/s ist der relative Korrekturfaktor zwischen der zu testenden Komponente und der internen Referenz, Ai, AS sind die Peakflächen der zu messenden Komponente bzw. der internen Referenz, und Wi und WS sind die Mengen der zu messenden Komponente und die interne Referenz bzw.

Unter Verwendung von Echinacosid als interne Referenz nehmen Sie 1, 2, 5, 10, 15, 20 und 30 μl der gemischten Referenzlösung, um sie in das Injektionsvolumen umzuwandeln, und injizieren und messen Sie gemäß den chromatographischen Bedingungen unter "1.2.2.1". . Messen Sie den relativen Korrekturfaktor (fi/s) von Ductosid A (B), Verbascosid (C), Isaveraside (D) und internem Referenz-Echinacosid (A) und nehmen Sie den Mittelwert als relative Korrektur für die Quantifizierung der RSD des Relativen Der an 7 Punkten berechnete Korrekturfaktor wurde untersucht. Die Ergebnisse zeigten, dass die RSD des relativen Korrekturfaktors der drei getesteten Komponenten und des internen Referenz-Echinacosids alle weniger als 3 Prozent betrugen, wie in Tabelle 4 gezeigt.

Tabelle 4 Relative Korrekturfaktoren (fi/s) von 3 Komponenten und interne Echinacosid-Referenz

Hinweis: A: Echinacea, B: Tuberosid A, C: Verbasin, D: Isaveraside

2.2.8 Reproduzierbarkeit relativer Korrekturfaktoren

Drei Hochleistungsflüssigkeitschromatographen, Shimadzu LC-20AT, Shimadzu LC-20AB, Agilent1260 und INERTSILODS-3 (250 mm × 4,6 mm, 5 μm), XBridgeC18, wurden jeweils untersucht.

Die Auswirkungen von drei Chromatographiesäulen (250 mm × 4,6 mm, 5 μm) und Agilent C18 (250 mm × 4,6 mm, 5 μm) auf den relativen Korrekturfaktor und die Berechnung der RSD, die Ergebnisse sind alle kleiner als 3 Prozent, was darauf hinweist, dass der etablierte relative Korrekturfaktor in verschiedenen Hochleistungsflüssigkeiten. Der Phasenchromatograph und verschiedene Chromatographiesäulen waren reproduzierbar, die Ergebnisse sind in Tabelle 5 dargestellt

Tabelle 5 Relative Korrekturfaktoren（fi/s）von 3 Komponenten und Echinacosid durch verschiedene Geräte und verschiedene HPLC-Säulen

Hinweis: A: Echinacea, B: Tuberosid A, C: Verbasin, D: Isaveraside

2.2.9 Positionierung der chromatographischen Peaks der zu messenden Komponenten

Berechnen Sie anhand der unter "2.2.8" ermittelten Retentionszeit den relativen Retentionswert der zu testenden Komponente und des internen Referenz-Echinacosids (ri/s= tRi/tRs, wobei tRi und tRs die Retentionszeit sind ) und seine RSD. Ergebnisse Die RSDs der relativen Retentionswerte der zu testenden Komponenten waren alle kleiner als 5 Prozent, was anzeigt, dass die relativen Retentionswerte stabil waren und für die Lokalisierung der chromatographischen Peaks der zu testenden Komponenten verwendet werden konnten. Die Ergebnisse sind in Tabelle 6 gezeigt.

2.2.10 Vergleich der Messergebnisse zwischen einem Test und mehreren Bewertungsverfahren und externen Standardverfahren

Wiegen Sie jede Probencharge genau, bereiten Sie die Testlösung gemäß Punkt „1.2.1.3“ vor, entnehmen Sie genau 10 μL der gemischten Referenzlösung und der Testlösung und injizieren Sie die Proben gemäß den chromatographischen Bedingungen unter "1.2.2.1". , zeichnen Sie die Peakflächen der vier Komponenten auf und verwenden Sie die externe Standardmethode und die etablierte Methode mit einer Messung und mehreren Auswertungen (Wi=fi/s×Ws×Ai/As), um die Inhalte der zu berechnen jeweils vier Komponenten. Die Ergebnisse sind in Tabelle 7 gezeigt. SPSS 26.0-Software wurde verwendet, um die Ergebnisse der beiden Methoden durch den t-Test zu analysieren, P > 0,05, was darauf hinweist, dass es keinen signifikanten Unterschied zwischen dem durch den externen Standard gemessenen Gehalt gab Methode und der Inhalt, der nach der Methode mit einem Test und mehreren Bewertungen berechnet wird, was darauf hinweist, dass die Methode mit einer Messung und mehreren Bewertungen für Cistanche deserticola-Abkochungsstücke, Qualitätskontrollforschung von Wirkstoffen in Extrakten und Gesundheitsprodukten verwendet werden kann.

Tabelle 6 Die relativen Retentionswerte（ri/s）von 3 Komponenten und Echinacosid durch verschiedene Geräte und verschiedene HPLC-Säulen

Hinweis: A: Echinacea, B: Tuberosid A, C: Verbasin, D: Isaveraside

3 Abschluss der Auswahlder beste Weg, um Cistanche einzunehmen

Um die Effizienz der Identifizierung und die Vielfalt der Identifizierungsmethoden zu verbessern, fügte dieser Test zwei Komponenten hinzu, Ductosid A und Isaveraside, auf der Grundlage des Identifizierungstests unter dem Punkt Cistanche deserticola in der Ausgabe 2020 des Chinesischen Arzneibuchs. Es wurden die Entwicklungsbedingungen des Arzneibuchs verwendet: Methanol. – Eisessig – Wasser=2:1:7, es wurde festgestellt, dass der Trennungsgrad von Echinacosid und Tuberosid A die Anforderungen nicht erfüllen konnte, und der Screening-Test der stationären Phase bzw. des Entwicklungsmittels wurde durchgeführt.

Unter Verwendung von Polyamidfolienplatte, Kieselgel-G-Dünnschichtplatte, Kieselgel-H-Dünnschichtplatte als stationäre Phase, Aceton-Methanol-Eisessig-Wasser=1:2:1:7, Methanol-Eisessig -Wasser=4:1:5. Ethylacetat:Ethanol=6:4, n-Butanol-Ethanol-Wasser=4:1:5, Trichlormethan-Methanol-Eisessig-Wasser =1.5:2:1:7 Ergebnisse Unter Verwendung einer Polyamidfilmplatte als stationäre Phase, Chloroform-Methanol-Eisessig-Wasser=1.5∶2∶1∶7, waren die Flecken klar , die Trennung war gut, der Rf-Wert war mäßig und die Wiederholbarkeit war gut. Schnelle und genaue Charakterisierung von Inhaltsstoffen. Das One-Measurement-Multiple-Evaluation-Verfahren ist ein synchrones Multi-Index-Qualitätskontrollverfahren, das hauptsächlich zur Bestimmung ähnlicher Strukturkomponenten in einer einzigen traditionellen chinesischen Medizin verwendet wird. Die vier in diesem Experiment gemessenen Komponenten haben ähnliche Strukturen und ähnliche maximale Absorptionswellenlängen (Echinacea-Glykoside bei 330 nm, Tuberosid A331 nm, Verbascosid 330 nm, Isorrascosid 327 nm), sodass dieses Verfahren verwendet werden kann. Unter Verwendung von Echinacosid als interne Referenz weist der etablierte Kalibrierungsfaktor eine gute Reproduzierbarkeit in verschiedenen Chromatographiesystemen und Chromatographiesäulen auf, und es gibt keinen signifikanten Unterschied zwischen den Inhaltsergebnissen der Methode mit einer Messung und mehreren Bewertungen und der Methode mit externem Standard, was darauf hindeutet die Methode ist praktikabel und genau und kann in der Referenzsubstanz verwendet werden. Wenn es schwierig zu beschaffen oder teuer ist, kann es mehrere Indikatoren für Cistanche deserticola erreichen

Gleichzeitig werden die Inhaltsstoffe bestimmt.

Tabelle 7 Inhalt der einzelnen Komponenten（Prozent,n=3）

Abschließend die Etablierung einer Methode zur Identifizierung von vier Phenylethanoidglykosiden in Cistanche durchTLCund die Bestimmung des Inhalts in einem Test mit mehreren Auswertungen ist genau, zuverlässig, einfach, schnell und sehr gut durchführbar. Sie hat praktische wissenschaftliche Bedeutung und Anwendungswert.