Abstrakt:VerwendungCistanche DeserticolaIn dieser Studie wurden zwei Wirtspflanzen (Haloxylon Ammodendron und Atriplex Canescens) als Testmaterialien parasitiert. Diese Studie ergab den Polysaccharidgehalt in C. deserticola von verschiedenen Wirten unter Verwendung der Phenol-Sulfursäure-Methode. Transkriptomsequenzierung und Analyse von Haloxylon-Cistanche undAtriplex-Cistanche-Assoziationenwurden unter Verwendung der Illumina Novaseq 6000 Sequenzierungsplattform durchgeführt. Die Forschung konzentrierte sich auf die Untersuchung der Transkriptomunterschiede in C. deserticola aus verschiedenen Wirten, Screening wichtige enzymatische Gene, die am Polysaccharid-Metabolismus beteiligt sind, und die Validierung der ausgewählten Gene durch qRT-PCR-Überprüfung. Diese Studie zielt darauf ab, eine theoretische Grundlage für die Erforschung neuer Wirtspflanzen und die genetische Verbesserung von C. deserticola zu bilden. Das Ergebnis zeigte, dass der in Atriplex Quadriptera-C.Deserticola gefundene Polysaccharidgehalt dem in Haloxylon Ammodendron-C vorliegenden überlegen war. Deserticola. Durch die vergleichende Analyse des Transkriptoms wurden 14089 differentiell exprimierte Gene (DEGs) aus den fleischigen Stämmen von Atriplex Quadriptera-C untersucht. Deserticola und Haloxylon Ammodendron-C. Deserticola. Die Ergebnisse der KEGG -Anreicherungsanalyse zeigten, dass diese DEGs am stärksten in Wegen angereichert waren, die mit dem Kohlenhydratmetabolismus, dem Galaktose -Metabolismus, dem Aminosäurestoffwechsel und dem Fettsäuremetabolismus zusammenhängen. Darüber hinaus wurden insgesamt 26 degs aus vier mit dem Polysaccharidstoffwechsel verbundenen Wegen erhalten, unter denen die Expressionsniveaus des Fructosidase -Gens und des Galactosidase -Gens in Haloxylon Ammodendron -C. Deserticola war signifikant höher als in Atriplex Quadriptera-C. Deserticola. Die Expressionsniveaus von UDP-Glucose-Dehydrogenase-Gen und Mannose -1- Phosphat-Guanylat-Transferase-Gen in atriplex quadriptera-c. Deserticola war signifikant höher als in Haloxylon Ammodendron-C. Deserticola, das die wichtigsten Enzymgene sein kann, um den Unterschied des Polysaccharid -Metabolismus in C. deserticola zu regulieren.

Schlüsselwörter Cistanche Deserticola; TranskriptomsequenzierungHosts; Unterschied des Polysaccharidstoffwechsels

Cistanche Deserticola

 

Cistanche Deserticola yc ma, in erster Linie verteilt inGansu, Xinjiang, Ningxia und innere Mongolei, ist ein traditionelles chinesisches medizinisches Kraut, das kürzlich in die enthalten ist"medizinische und Lebensmittel homolog"Katalog. Es hat verschiedene gesundheitliche Vorteile, wie z.tonifizierende Niere Yang, nahrhaftes Essenz und Blut und Förderung des Stuhlgangs, damit es weit verbreitet ist inMedizin, Gesundheitswesen und Lebensmittelindustrie[1]. Wegen seinerheterotrophe Natur, Cistanche Deserticolaparasitisiert verschiedene Wirtspflanzen mitHaloxylon Ammodendronund die neu eingeführtenSemi-Evergreen-StrauchAtriplex canescens(Pursh) Nutt.sein primärer Gastgeber.

Polysaccharide sind die wichtigsten aktiven Substanzen bei der BewertungCistanche DeserticolaQualität. Unter verschiedenen Wirtsbedingungen dieAkkumulation und StoffwechselzusammensetzungvonCistanchePolysaccharide variieren signifikant [2]. Die medizinische Forschung hat gezeigtCistanchePolysaccharide besitzenantioxidativ, neuroprotektiv, immunregulierend und vermutungsverbessertpharmakologische Wirkungen, effektiv lindernAlzheimer-Krankheit, Parkinson-Krankheit und Leberdepression induzierte Milzmangel[3]. Mit Fortschritten in der ModerneExtraktionstechniken und Multi-Spektrum-Analysetechnologien, DieInhalt, Komposition und strukturelle EigenschaftenvonCistanchePolysaccharide werden allmählich aufgeklärt und erweitern ihre Anwendungen.

BezüglichMolekulare BiologieforschungAnCistancheSpezies, Transkriptomsequenzierungsstudien haben sich hauptsächlich aufCistanche TubulosaUndHaloxylon-CistancheKomplexe Systeme.Zum Beispiel,Hou et al.[4] durchgeführtTranskriptom-Sequenzierung und Genexpression in voller Länge in voller LängevonCistanche TubulosaVerwendungPacbio und Bgiseq -500 RNA-Seq-TechnologienIdentifizierung237.772 Einzigartige Transkripteund Screening wichtiger Enzymgene, die an beteiligt sindPhenylethanoid -Glykosidbiosynthese. Ähnlich,Feng et al.[5] durchgeführttranskriptomische und metabolomische Analysender Haustoria und der angrenzenden Gewebe vonHaloxylonwurzeln undCistancheFleischige Stängeldie Rolle des Wirts bei der Ansammlung von enthüllenCistancheMetaboliten. Ihre Studie betonte, dass dieWirtspflanze beeinflusst nicht nur den Ausbeute vonCistancheaber auch seine Qualität. Forschungen jedoch zuCistancheDie Parasitierung verschiedener Wirtspflanzen bleibt begrenzt.

Atriplex canescens, a tief verwurzelte und sehr stressresistente Pflanzeunterscheidet sich von den traditionellenHaloxylonwirtund stammt aus demSemi-aride Plateaus der zentralen Vereinigten Staaten. In den letzten Jahren wurde es eingeführt und gefördert alsneuer Gastgeber fürCistanche DeserticolaAnbauInNordwestchina. Ein Qing et al.[6] analysierten und verglichen diePolysaccharidakkumulation vonCistancheParasitisierung von Haloxylon und Atriplex Canescensim selben Produktionsbereich findensignifikante Unterschiede im Polysaccharidgehaltzwischen den beiden Wirtsbedingungen.

Somit zielt diese Studie darauf abSequenz die fleischigen Stiele vonCistanche DeserticolaParasitisierung von Haloxylon und Atriplex CanescensAnalyse derDifferentielle Expression von Schlüsselenzymgenen, die an der Polysaccharid -Biosynthese beteiligt sind. Die Ergebnisse werden a lieferntheoretische Grundlage für weitere Forschungen zuCistanchePolysaccharid-Biosynthesemechanismen, telkriptomische Studien zu Attriplex- angreifenCistancheSysteme und fördern Innovationen in hochwertiger QualitätCistancheKeimplasma -Ressourcen.

 

Materialen und Methoden

1.1 Experimentelle Materialien

Cistanche DeserticolaProben parasitisierenHaloxylon AmmodendronUndAtriplex canescenswurden aus dem gesammeltCistancheKultivierungsbasis inXiquan Town, Jingtai County, Provinz Gansu(Breite36 Grad 5 'n, Länge103 Grad 42 'e). BeideHaloxylonUndAtriplex canescenswurden in derselben Umgebung kultiviert. Die Proben wurden als kategorisiert wieHaloxylon-Cistanche(Probe A)UndAtriplex-Cistanche(Probe H),,mit drei Replikaten für jede Kategorie (fünf Pflanzen pro Replikat). Probenahme wurde in durchgeführtApril 2024und die Proben wurden als identifiziert alsCistanche DeserticolaFleischige Glühbirnen vorbeiProfessor Guo Yehongvon derHochschule von Landwirtschaft, Gansu Landwirtschaft Universität.

Folgt demStichprobenrichtlinien von Shanghai OE Biotech Co., Ltd., DieCistancheFleischige Stängel wurden mit ultralem Wasser gespült, und überschüssige Feuchtigkeit wurde unter Verwendung von Filterpapier entfernt. Dünne Scheiben wurden aus dem entnommenober, mittlere und untenvon jedem Stamm gründlich gemischt und in kryogene Fläschchen gelegt. Die Proben warenschnell in flüssigem Stickstoff gefrorenfür2 Stundenbevor er auf a übertragen wird-80 Grad Gefrierschrankzur Speicherung [7].

1.2 Experimentelle Methoden

1.2.1 Einrichtung einer Standardkurve und Bestimmung des Polysaccharidgehalts

A 10 mgProbe vonD-Glucose-Standardwurde genau gewogen und in a gelöst100 ml Volumenkolbenmit destilliertem Wasser, um a zuzubereiten100 ug · ml⁻¹ Stammlösung. Kalibrierungslösungen von{{0}}. 2, 0. 4, 0. 6, 0. 7, 0. 8 und 0,9 mlder Stammlösung wurden in übertragen in10 ml abgespannte Reagenzgläser, verdünnt mit Wasser zu1. 0 mlund dann gemischt mit1. 0 ml von 6% PhenollösungUnd5 ml konzentrierter Schwefelsäure. Nach der Verhandlung wurden die Lösungen in einem kochenden Wasserbad für erhitzt20 Minuten, dann in einem Eiswasserbad für abgekühlt10 Minuten. A Blankheitskontrollewurde verwendet1. 0 ml destilliertes Wasseranstelle der Glukoselösung. Die Absorption wurde bei gemessen482 nmmit aUV-Vis-Spektrophotometerund aStandardkurvewurde mitKonzentration (x) als horizontale AchseUndAbsorption (y) als vertikale Achse.

Folgt einem modifizierten Ansatz vonLi Jie et al. [8], 0. 2 g getrocknetCistanchePulverwurde genau gewogen und in a gestellt20 ml Stoppröhrchen gestoppt. 10 ml 80% Ethanolwurde hinzugefügt und die Mischung wurde unterzogenUltraschalleerextraktion bei 80 Grad (100 W, 40 kHz) für 30 Minuten. Der Extrakt wurde während heiß gefiltert und die Prozedur wurde einmal wiederholt. Nach dem Trocknen des Rückstands,10 ml destilliertes Wasserwurde hinzugefügt und die Ultraschallextraktion wurde zweimal wiederholt. Die Filtrate wurden kombiniert und verdünnt zu20 mlmit destilliertem Wasser.1. 0 ml dieser Lösungwurde weiter verwässert auf10 mlmit destilliertem Wasser.

A 1. 0 ml aliquotder vorbereitetenCistancheDie Probenlösung wurde unter Verwendung des gleichen Verfahrens wie der Glukosestandard analysiert. Die Absorption bei482 nmwurde gemessen und der Polysaccharidgehalt vonCistancheaus verschiedenen Wirtspflanzen wurde berechnet.

1.2.2 RNA -Extraktion, cDNA -Bibliothekskonstruktion und Sequenzierung

Die Gesamt -RNA wurde aus extrahiertCistanche DeserticolaProben parasitisierenHaloxylon AmmodendronUndAtriplex canescensVerwenden derTianggen DP441 RNA Kit (China), folgt demTrizol -Reagenz -Protokoll. RNA -Reinheit wurde mit a bewertetNanodrop 2000 -Spektrophotometer (Thermo Scientific, USA)während die RNA -Konzentration und -integrität unter Verwendung eines bewertet wurdenAgilent 2100 Bioanalysator (Agilent Technologien, USA).

Transkriptombibliotheken wurden mit dem konstruiertVAHTS Universal V6 RNA-Seq Library Prep Kit. Nach Qualitätskontrolle mit demAgilent 2100 BioanalysatorDie Bibliotheken wurden auf dem sequenziertIllumina Novaseq 6000 Plattform, erzeugen150 bp Paired-End-Lesevorgänge.

1.3 Datenanalyse

1.3.1 Transkriptom -Assemblierung und funktionale Annotation

Roh liest einFASTQ -Formatwurden verwendetTrimmomatischzu entfernenPloy-n Reads und minderwertige Lesevorgänge, ergebendsaubere Lesungen. Adaptersequenzen und minderwertige Regionen wurden entfernt, und die sauberen Lesevorgänge wurden zusammengebautContigs(ausgedrückte Sequenz -Tags) verwendenDreifaltigkeitssoftware. Das längste Transkript aus jedem Cluster wurde als ausgewähltUnigenzur weiteren Analyse.

Die funktionale Annotation von Unigenen wurde durchgeführt, indem sie mit dem verglichen wurdeNCBI-Proteindatenbank, Schweizer und die evolutionäre Genealogie von Genen: nicht überprüfte orthologe Gruppen (Eierlikör), NCBI-Datenbank für die evolutionäre GenealogieVerwendungDiamond-Software (E-Wert <1e -5). Eukaryotische orthologe Gruppen (KOG) Annotationwurde durchgeführt, um homologe Gene zu identifizieren. Zusätzlich wurden Unigenes auf die Kartierung von zugeordnetKyoto -Enzyklopädie von Genen und Genomen (KEGG) WegenFür Annotation des Stoffwechselweges.Gene Ontology (GO) Klassifizierung und funktionale Annotationwurden unter Verwendung von Zuordnungen aus der Schweizer-Prot-Datenbank durchgeführt.

1.3.2 Genexpressionsanalyse und Identifizierung von differentiell exprimierten Unigenen (DEGS)

Die Genexpressionsniveaus wurden unter Verwendung quantifiziertFliege2saubere Lesungen auf Unigenes ausrichten. Ausdruckswerte wurden berechnet alsFragmente pro Kilobase von Transkript pro Million zugeordnete Lesevorgänge (FPKM)VerwendungExpress -Software. Die differentielle Expressionsanalyse wurde unter Verwendung durchgeführtDeSeq2 -Software, mitnegative Binomialverteilung (NB) -TestsWird für Signifikanztests verwendet. Differentiell exprimierte Gene (DEGs) wurden definiert als solche mitQ-Wert <0. 05UndFold Change (FC)> 2.

1.3.3 QRT-PCR-Validierung von differentiell exprimierten Genen

Schlüsselenzymgene, die an beteiligt sindPolysaccharid Biosynthesemitsignifikanter unterschiedlicher Ausdruckwurden ausgewählt fürQuantitative Echtzeit-PCR-Validierung (QRT-PCR). RNA-Proben wurden qualitätsbefragt und die OD-Werte vor der umgekehrten Transkription gemessen. Die cDNA -Synthese wurde unter Verwendung der durchgeführtTransscript All-in-One First-Strang-cDNA-Synthese-Supermix für QPCR-Kit. Die synthetisierte cDNA wurde verdünnt10- faltenund QRT-PCR wurde mit a durchgeführtfluoreszierendes QPCR -Systemunter verschiedenen Fahrradbedingungen.ACTB (Beta-Actin) wurde als internes Referenzgen verwendetund relative Genexpressionsniveaus wurden unter Verwendung der berechnet2⁻ & Dgr ;- & Dgr; CT -Methode.

 

Tabelle 1 Primersequenzen

Gene id	Genname	Vorwärts -Primer (5 '-3')	Reverse Primer (5 '-3')
Trinity _ dn 21412_ c 0_ g {{3} i 1_2	GMPP	GATAGTGGCTACAACATCCACTT	CCTCCTCTTCGTCGTAGGATTC
Trinity _ dn 30174_ c 0_ g {{3} i 17_2	PFP	Tatatgggaccatggaaccaa	GACCATAGGCCGTGATCGATC
Trinity _ dn 25715_ c 0_ g {{3} i 4_1	Ugdh	AaagatcttccgttcGtaagc	ACCAATTCGTTGATGCTACC
Trinity _ dn 28766_ c 1_ g {{3} i 6_1	lacz	GTCTCCTTGTTATTCGTGAGGAT	Gtcgatggtggtgaagcagat
Trinity _ dn 24102_ c 0_ g {{3} i 1_1	Saca	Ttacgaggatagtgaggtgcta	Aatggaagatgaggagttga
Trinity _ dn 21508_ c 1_ g {{3} i 4_2	lacz	GGCACAGTCAAGGAGTACGATG	CACTGGCATCGACGAGAGAAAG
-	Actb	CAATGGATGATGATCGCCGCGT	CACTGGCATCGACGAGAGAAAG

 

 

1.4 Datenanalyse

Hierarchische Clusteranalyse vondifferentiell exprimierte Gene (DEGs)wurde verwendetR (v3.2.0)Genexpressionsmuster über Gruppen und Proben hinweg visualisieren. GO (Gen -Ontologie) Analyseanalyse undKegg (Kyoto Encyclopedia von Genen und Genomen) Weganreicherungsanalysewurden verwendetRbasierend auf demHypergeometrische Verteilung. Die signifikant angereicherten funktionalen Begriffe wurden verwendetBalkendiagramme, Blasendiagramme und Anreicherungskreisdiagramme.

2 Ergebnisse und Analyse

2.1 Ermittlung von Polysaccharidgehaltsergebnissen

Die aus den Absorptionsmessungen erhaltene lineare Regressionsgleichung war:

y {{0}}. 0 154x - 0.1636 (r 2=0. 9963) y=0. 0154x - 0. 1636 \ quad \ quad (R^2=0. 9963) y =0. 0154x - 0.1636 (r 2=0. 9963)

mit einem linearen Bereich von20–90 ug · ml⁻¹. Die Präzision, Wiederholbarkeit, Stabilität und Probenwiederherstellungsrate waren{{0}}. 38%, 0. 86%, 0,53%und 99,67%, jeweils.

Das gemessenPolysaccharidinhaltInCistanche DeserticolaProben aus verschiedenen Wirtspflanzen waren:

Haloxylon-Cistanche: 6.51%

Atriplex-Cistanche: 11.83%

2.2 Transkriptomsequenzierung und Datenanordnung

Transkriptomsequenzierung vonsechs Probenerzeugte insgesamt41,77 g sauberen Daten. Die gültigen Daten pro Stichprobe lagen von ab6,89 g bis 7,04 g, mitQ30 Basisprozentsätze zwischen 95,38% und 95,91%und andurchschnittlicher GC -Gehalt von 45,13%.

Insgesamt61.423 Unigeneswurden zusammengebaut, mit einer Gesamtlänge von65.962.858 bpund andurchschnittliche Länge von 1.073,91 bp.

2.3 funktionelle Annotation der Gene

Insgesamt61.423 Unigeneswurden aus der Sequenzierung von erhaltenCistanche DeserticolaProben parasitieren zwei verschiedene Wirtspflanzen. Die Annotationsergebnisse sind wie folgt:

30.689 Unigenes (49,96%)wurden in der kommentiertNR (nicht redundante) Proteindatenbank.

18.698 Unigenes (30,44%)wurden in der kommentiertSchweizer Protokolldatenbank.

3.998 Unigenes (6,51%)wurden in der kommentiertKEGG -Datenbank.

17.188 Unigenes (27,98%)wurden in der kommentiertKOG (eukaryotische orthologe Gruppen) Datenbank.

25.280 Unigenes (41,16%)wurden in der kommentiertEierlikör (evolutionäre Genealogie von Genen: nicht überprüfte orthologe Gruppen) Datenbank.

16.210 Unigenes (26,39%)wurden in der kommentiertGO (Gene Ontology) Datenbank.

16.153 Unigenes (26,30%)wurden in der kommentiertPFAM -Datenbank (Proteinfamilien).

Darunter,21.650 Unigeneswaren länger als1 kb.

Homologieanalyse basierend auf derNR -Datenbankzeigten, dass die drei am engsten verwandten Arten:

Paulownia Fortunei (30,23%)

Phheirospermum japonicum (14,15%)

Chenopodium quinoa (7,1%)

 

 

Tabelle 2 Annotationsinformationen vonCistanche DeserticolaGenfunktion

Datenbank	Annotationsgennummer	Anteil (%)
Nr	30,689	49.96
Schweizer	18,698	30.44
Kegg	3,998	6.51
Kog	17,188	27.98
Eierlikör	25,280	41.16
GEHEN	16,210	26.39

 

 

2.4 Go und Kegg funktionale Annotation und Klassifizierung

DerGO (Gene Ontology) Datenbankwurde verwendet, um die in der identifizierten Unigene weiter zu kommentierenNR -Datenbank, was zu insgesamt führt16.210 Unigenes. Diese Unigene wurden in kategorisiertDrei Hauptfunktionsgruppen:

Biologischer Prozess (BP)

Molekülfunktion (MF)

Zellkomponente (CC)

Imbiologischer Prozess (BP) KategorieDie am häufigsten vorkommenden Unigen -Cluster waren:

"Zellulärer Prozess" (11.023 Unigenes)

"Stoffwechselprozess" (9.117 Unigenes)

Für dieKategorie der Zellkomponente (CC), 17 Unterkategorienwurden identifiziert, wobei jede Unterkategorie zumindest enthält30 Unigenes. Die größten Cluster waren:

"Zelle" (13.947 Unigenes)

"Zellteil" (13.918 Unigenes)

ImKategorie der Molekülfunktion (MF)Die am meisten angereicherten funktionellen Gruppen waren:

"Bindung" (10.039 Unigenes)

"Katalytische Aktivität" (8.490 Unigenes)

Abb.2 GO funktionelle Annotation und Klassifizierung von Unigenen

 

KEGG FUNKTIONALE Annotation und Klassifizierung

WährendTranskriptomsequenzierunginsgesamt insgesamt3.998 Unigeneswurden in der kommentiertKegg (Kyoto Encyclopedia von Genen und Genomen) Datenbank. Diese Unigene wurden in eingeteiltsechs Hauptkategorien, mit ihren jeweiligen Unigen -Zählungen und Proportionen wie folgt:

Zelluläre Prozesse: 326 Unigenes (8.15%)

Umweltinformationsverarbeitung: 299 Unigenes (7.47%)

Genetische Informationsverarbeitung: 1.771 Unigenes (44.30%)

Menschliche Krankheiten: 14 Unigenes (0.35%)

Stoffwechsel: 1.465 Unigenes (36.64%)

Organismalsysteme: 123 Unigenes (3.07%)

Diese sechs Hauptkategorien wurden weiter unterteilt in20 Sekundärklassifizierungsstufen. Darunter,Genetische Informationsverarbeitunghatte den höchsten Anteil, gefolgt vonStoffwechsel. Innerhalb derStoffwechselKategorie, die am häufigsten vorkommenden Pfade waren:

Kohlenhydratstoffwechsel

Fettsäurestoffwechsel

Flavonoid -Stoffwechsel

Abb.3 KEGG Metabolic Pathway Annotation von Unigenen

 

2.5 Differentielle Genexpression und Anreicherungsanalyse vonCistanche Deserticolavon verschiedenen Gastgebern

Die Transkriptom -Sequenzierungsdaten wurden mit dem filtriertAuswahlkriterien für die Auswahl der Differentialausdrucks, was zur Identifizierung von führt14.089 differentiell exprimierte Gene (DEGs):

6.576 Gene wurden hochreguliert

7.513 Gene waren herunterreguliert

A Vulkandiagrammwurde erzeugt, um die Gesamtverteilung von DEGs zu visualisieren.

ImTop 30 GO -Anreicherung funktionale Klassifizierungenvon DEGs wurde beobachtet, dass:

Im Vergleich zuBiologischer Prozess (BP)UndZellkomponente (CC)Kategorien,Molekülfunktion (MF)zeigten eine bedeutendere Abgrenzung.

Die besonders angereicherten DEGs waren in Verbindung gebrachtNukleinsäurestoffwechsel, Proteinstoffwechsel und Schlüsselenzyme im Galactose -Metabolismus.

Zusätzlich waren DEGs signifikant angereichert inGO -Begriffe im Zusammenhang mit dem Polysaccharid -Stoffwechsel, einschließlich:

Stärkemetabolischer Prozess

Glykogen -Biosyntheseprozess

Saccharose -Katabolprozess

Glucosidaseaktivität

UDP-L-Rhamnose-Synthaseaktivität

Polysaccharidhydrolaseaktivität

Abb.4 Vulkankarte von differentiell exprimierten Genen

 

KEGG -Pfadanreicherungsanalyse von DEGs inCistanche Deserticolavon verschiedenen Gastgebern

Um die weiter zu untersuchendifferentiell exprimierte Gene (DEGs)InCistanche Deserticolaaus verschiedenen Wirtspflanzen,Analyse der Anreicherung von Kegg Pathway Anreicherungwurde durchgeführt. Die Analyse ergab:

DEGs wurden auf 117 Stoffwechselwege abgebildet.

DerTop 20 Wegegezeigtsignifikante Abgrenzung, mit den am meisten angereicherten Wegen, einschließlich:

Fettsäurestoffwechsel

-Linolensäure Metabolismus

Galactose -Stoffwechsel

Lysin -Abbau

Eine weitere Anreicherungsanalyse derTop 20 Stoffwechselkategorien mit den kleinsten Q-Wertenzeigte, dass DEGs signifikant angereichert waren in:

Organismalsysteme

Stoffwechsel

Genetische Informationsverarbeitung

Unter diesen Kategorien,"Stoffwechsel"hatte die höchste Anzahl an angereicherten DEGs und zeigte die bedeutendste Anreicherung. Darüber hinaus in den angereicherten Stoffwechselwegen dieDer Anteil der hochregulierten und herunterregulierten Unigene war fast gleich.

Diese Ergebnisse deuten darauf hinStoffwechselwege spielen eine entscheidende Rollein der unterschiedlichen Genexpression vonCistanche Deserticolavon verschiedenen Wirtspflanzen, besonders inLipid-, Kohlenhydrat- und Aminosäuremetabolismus.