Kombination von Mikrobläschen-Kontrastmittel mit gepulster Laserbestrahlung zur transdermalen Arzneimittelabgabe Teil 1

Apr 03, 2023

Abstrakt: Der optodynamische Prozess der laserinduzierten Mikroblasenkavitation (MB) in Flüssigkeiten wird in verschiedenen medizinischen Anwendungen genutzt. Allerdings lässt sich kaum abschätzen, wie einfallende Laserstrahlung mit MBs als Ultraschallkontrastmittel interagiert, wenn die Flüssigkeit bereits stabile MBs enthält. Die vorliegende Studie untersuchte die Effizienz der laservermittelten Kavitation von Albumin-umhüllten MBs bei der Verbesserung der transdermalen Arzneimittelabgabe. Zunächst wurden verschiedene Arten und Bedingungen der laservermittelten Trägheitskavitation von MBs bewertet. Für die Kombination mit MBs in den In-vitro- und In-vivo-Experimenten wurde ein CO2-fraktionierter gepulster Laser ausgewählt. Die In-vitro-Hautpenetration von Arbutin nach 2 Stunden war in der Gruppe, die einen Laser mit MBs kombinierte, doppelt so hoch wie in der Kontrollgruppe. In Kleintierversuchen erhöhte sich der aufhellende Effekt auf die Haut von C57BL/6J-Mäusen in der Gruppe, die einen Laser mit MBs auf der Haut plus durchdringendem Arbutin kombinierte, (signifikant) um 48,0 Prozent am 11. und 5. Tag 0,0 Prozent am 14. Tag und tendierte dann dazu, sich für den Rest des 20-tägigen Versuchszeitraums zu stabilisieren. Die vorliegenden Ergebnisse deuten darauf hin, dass die Kombination eines CO2-Lasers mit MBs mit Albuminhülle die Hautdurchlässigkeit erhöhen kann, um die Abgabe von Arbutin zu verbessern und so die Melanogenese bei Mäusen zu hemmen, ohne die Haut zu schädigen.

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Schlüsselwörter:Ultraschallkontrastmittel; Laser; transdermal; Hohlraumbildung; Arbutin

1. Einleitung

Kavitation bezieht sich auf die Bildung von Hohlräumen in einer Flüssigkeit und tritt normalerweise auf, wenn die Flüssigkeit schnellen Druckänderungen ausgesetzt ist. Solche Druckänderungen können mit vielen verschiedenen Methoden induziert werden, wobei akustische Kavitation ausgelöst wird, wenn die Amplitude eines angelegten akustischen Drucks einen bestimmten Schwellenwert überschreitet [1]. Bei der akustischen Kavitation kommt es zur Bildung, zum Wachstum, zum Pulsieren und zum Kollabieren von Mikroblasen (MBs) in Flüssigkeiten während der Beschallung durch hochintensive Ultraschallwellen (US). Es wird angenommen, dass diese Phänomene für die Vermischung, Fragmentierung, Erosion, Benetzung, sonokapillare Wirkung und andere Effekte verantwortlich sind, die verschiedene praktische industrielle Anwendungen haben [1].

Auch die US-induzierte Kavitation von MB-Kontrastmitteln spielt sowohl bei diagnostischen als auch bei therapeutischen medizinischen Anwendungen eine wichtige Rolle. US-Kontrastmittel sind stabilisierte und beschichtete MBs, die intravasal injiziert werden, um die Auflösung der diagnostischen US-Bildgebung zu verbessern [2]. Zahlreiche Studien belegen, dass das Vorhandensein von MB-Kontrastmitteln im Blut die Schwelle für verschiedene US-induzierte biologische Wirkungen sowohl in vitro als auch in vivo senken kann, wie z. B. Hämolyse, Kapillarruptur und Sonoporation [3]. Einige Studien haben darauf hingewiesen, dass das Vorhandensein von MB-Kontrastmitteln im Blut die Schwelle für US-induzierte vorzeitige Herzkontraktionen deutlich senkt [4,5]. Die Resonanz von MBs (stabile Kavitation) führt zu nichtlinearen harmonischen Emissionen, die in der MB-spezifischen Kontrastbildgebung genutzt werden können. Die Trägheitskavitation und die Zerstörung von MBs können starke mechanische Belastungen hervorrufen, die die Durchlässigkeit von Zellmembranen und der Blut-Hirn-Schranke erhöhen und so die Abgabe therapeutischer Wirkstoffe verbessern. In unseren früheren Studien haben wir die durch die USA induzierte Trägheitskavitation von MBs angewendet, um die transdermale Arzneimittelabgabe (TDD) zu verbessern, da festgestellt wurde, dass Trägheitskavitation im Vergleich zur stabilen Kavitation zu einer weitaus größeren Permeabilitätssteigerung des Stratum Corneum führt [6–8] .

Laserbestrahlung ist ein alternativer Ansatz zur Verbesserung der Arzneimittelpermeation und damit zur Erleichterung der Arzneimittelabgabe in oder über die Haut. Wenn ein Laserimpuls mit einer Intensität über einem bestimmten Schwellenwert auf eine Flüssigkeit fokussiert wird, kann eine explosionsartige Verdampfung der Flüssigkeit auch MB-Kavitation induzieren [9,10]. Die aggressive Natur der laserinduzierten Kavitation hat dazu geführt, dass sie in einem breiten Anwendungsspektrum eingesetzt wird, darunter Zelllyse, Zellmembranporation und Augenchirurgie [11]. Kürzlich wurden Strategien zur sicheren Verbesserung des Erscheinungsbilds von postoperativen, atrophischen und Aknenarben unter Verwendung fraktionierter ablativer und nichtablativer Laser demonstriert [12]. Die ablative Laser-Hauterneuerung bietet die größten klinischen Verbesserungen, die postoperative Genesung dauert jedoch mehrere Wochen [13]. Nichtablative Laserverfahren eignen sich möglicherweise besser für Patienten, die eine längere postoperative Heilung nicht tolerieren können oder wollen. Eine frühere Herpes-simplex-Infektion kann jedoch nach einer nichtablativen Laser-Hautremodellierung aufgrund der starken Hitze, die durch den Laser oder eine andere Lichtquelle erzeugt wird, reaktivieren [13].

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Es wurden einige Methoden entwickelt, um die durch Laserbestrahlung erzeugte Wärme zu reduzieren, beispielsweise die Verwendung von Kontaktkühlhandstücken oder dynamischen Kryogeräten, die in der Lage sind, Kühlspraystöße mit variabler Dauer abzugeben [14]. Es besteht jedoch noch kein Konsens darüber, welche Kühlmethode während der Behandlung am effektivsten ist. Darüber hinaus bleibt, anders als in den USA, der Mechanismus, der den Auswirkungen der laserinduzierten Kavitation mit stabilisierten beschichteten MBs in Flüssigkeiten zugrunde liegt, unklar.

Die laservermittelte Kavitation von MB-Kontrastmitteln könnte auch bei TDD von großem Nutzen sein. Die vorliegende Studie untersuchte die Wirksamkeit einer neuen laservermittelten MB-Kavitationsmethode im Hinblick auf die Vermeidung der durch den Laser erzeugten starken Hitze und die Verbesserung der TDD sowohl in vitro als auch in vivo.

2. Materialien und Methoden

2.1. Herstellung von MBs mit Albuminhülle

Mit Albumin umhüllte MBs wurden gemäß dem in unseren früheren Studien verwendeten Verfahren hergestellt [7,15]. Kurz gesagt, Albumin-umhüllte MBs wurden durch Ultraschallbehandlung in 10 ml einer Lösung erzeugt, die 140 mg Albumin (Octapharma, Wien, Österreich) und Perfluorkohlenstoffgas in physiologischer Kochsalzlösung (pH 7,4, { {21}},9 Prozent Natriumchlorid) mit einem Ultraschallgerät (Branson Ultraschall, Danbury, CT, USA) für 2 Minuten. Die Anzahl der mit Perfluorkohlenstoff gefüllten Albumin-MBs in der Lösung wurde mit dem MultiSizer III-Gerät (Beckman Coulter, Fullerton, CA, USA) mit einer Sonde mit 30-µm-Apertur und Messgrenzen von 0,6–20 µm gemessen. Die Größenverteilung in der Suspension wurde anhand der dynamischen Lichtstreuung (Zetasizer Nano, ZS90, Malvern, UK) gemessen, die ergab, dass die mit Albumin umhüllten MBs einen Durchmesser von 1,02 ± 0,11 µm (Mittelwert ± Standardabweichung) und eine Konzentration von 1,40 aufwiesen × 108 MB/ml.

2.2. Laserinduzierte MB-Störung 

Frühere Studien haben gezeigt, dass eine US-vermittelte MB-Störung (dh Trägheitskavitation) für eine wirksame TDD erforderlich ist [8,16,17]. In der vorliegenden Studie wurde die Effizienz der MB-Disruption beim Einsatz verschiedener Lasertypen unter verschiedenen Bedingungen gemessen. Die Konzentration der MBs wurde in einem Eppendorf-Röhrchen auf 2,8 × 107 MBs/ml (fünffache Verdünnung) und 1,4 × 107 MBs/ml (zehnfache Verdünnung) eingestellt, und die Bestrahlung erfolgte durch vier Lasertypen: Luftgekühlter Argon-Ionen-Laser (515 nm, kontinuierliche Welle), Superkontinuum-Faserlaser (1064 nm, gepulste Welle), Nd: YAG-Laser (532 nm, gepulste Welle) und CO2-Fraktionslaser (10.600 nm, gepulste Welle). Die detaillierten Bedingungen für die verschiedenen Lasertypen sind in Tabelle 1 aufgeführt.

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Ein Beispiel für den optischen Aufbau ist in Abbildung 1 dargestellt. Die Temperaturänderung während der Laserbestrahlung wurde mit einem Thermometer (Optris LS, Optris, Berlin, Deutschland) gemessen. Anschließend wurden nach der Laserbestrahlung 100 µL der MB-Lösung zur Beobachtung auf einen Objektträger gegeben. Die Anzahl der MBs in Lichtmikroskopbildern vor und nach der Laserbestrahlung wurde mit MATLAB (The MathWorks, Natick, MA, USA) in 8--Bit-Graustufenbilder umgewandelt, um die Beobachtung von MB-Störungen zu erleichtern. Die Zerstörungsrate von MBs wurde anhand der beschädigten Bereiche mithilfe der folgenden Gleichung quantifiziert:

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Dabei sind A1 und Ai die Anzahl der schwarzen Pixel (entsprechend der MB-Menge) unmittelbar vor bzw. nach der Laserbestrahlung.

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2.3. Eindringtiefe in Schweinsleder

Die durch laservermittelte MB-Kavitation erreichbare Verbesserung der Eindringtiefe wurde anhand von Schweinsleder gemessen. Frische Schweinehaut wurde von dem Schlachthof bezogen, der dem New Taipei City Meat Market angeschlossen ist, und alle Experimente mit den Hautproben wurden innerhalb von 6 Stunden abgeschlossen. Es wurden kreisförmige Schweineohrhautproben mit einem Radius von 1,5 cm und einer Dicke von 3 mm hergestellt. Sie wurden mit Gel umschlossen, um ein Auslaufen zu verhindern, und dann mit Evans-Blau oder MBs beladen. Vor der Laserbestrahlung wurden 500 µL MBs in den Behandlungsbereich der Probe geladen und dann mit einem Nd:YAG-Laser und einem CO2-Fraktionslaser bestrahlt, die oben an der Probe angebracht waren. Jeder Lasertyp wurde nacheinander für unterschiedliche MB-Konzentrationen eingesetzt. Nach dem Entfernen der Salzlösung oder der MBs wurden 500 µL Evans-Blau (0,10 Gew.-%) hinzugefügt und 15 Minuten stehen gelassen. Anschließend wurde der Bereich dreimal jeweils 1 Minute lang mit PBS gewaschen.
Die behandelten Bereiche der Schweinshaut wurden dann in einer Lösung mit optimaler Schneidtemperatur (Surgipath FSC 22, Leica Microsystems, Buffalo Grove, IL, USA) auf runden Probenscheiben mit einem Durchmesser von 2,2 cm eingebettet. Die eingebetteten Proben wurden etwa 30 Minuten lang auf die Gefrierstufe eines Kryostaten (Microm HM550-Serie, Thermo Fisher Scientific, Bremen, Deutschland) bei –25 °C gelegt und anschließend wurde ein Querschnitt bei einer Schichtdicke von 10 µm durchgeführt. Auf den Objektträgern befestigte Schnitte wurden bei Raumtemperatur luftgetrocknet und für mikroskopische Untersuchungen montiert. Die Verteilung des Evans-Blaus in den Kryoschnitten wurde mit Hilfe eines Aufrechtmikroskops (DM 2500, Leica Microsystems) bestimmt. Die erhaltenen Ergebnisse zur Eindringtiefe in Schweinshaut zeigten, dass die optimale MB-Konzentration für den CO2-Fraktionslaser verwendet wurde und diese daher in den nachfolgenden In-vitro- und In-vivo-Experimenten verwendet wurde.

2.4. In-vitro-Hautpenetration durch -Arbutin-Lösung

Eine {{0}}mm dicke Probe Schweinehaut wurde mit einem Humby-Messer entnommen, sorgfältig mit PBS gereinigt und in quadratische Stücke (2 cm × 2 cm) geschnitten. Kreisförmige Bereiche auf den Hautproben mit einem Radius von 1,5 cm und einer Höhe von 5 mm wurden mit Gel umschlossen, um ein Auslaufen zu verhindern, wenn die Probe mit 5{{30}}0 µL MBs beladen wurde. Nach siebenmaliger Bestrahlung der Probe (die Bedingungen sind in Tabelle 1 aufgeführt) mit einem CO2-Fraktionslaser wurde die Hautpenetration mit statischen Franz-Diffusionszellen auf einer Fläche von 2,14 cm2 gemäß dem zuvor beschriebenen experimentellen Design getestet [7]. Die Temperatur der Diffusionsanordnung wurde bei 37 °C gehalten. -Arbutin (30 mg/ml, 500 µl, 4-Hydroxyphenyl- -D-Glucopyranosid, Molekularmasse=272,25 Da; Sigma-Aldrich, St. Louis, MO, USA) war Auf die epidermale Seite der Haut aufgetragen und mit Parafilm (Pechiney Laboratory Safety Products and Apparel, Chicago, IL, USA) verschlossen. Die der Hautseite zugewandte Rezeptordiffusionskammer wurde mit 12 ml PBS (pH 7,4) gefüllt, das von einem mit 600 U/min rotierenden Magnetstab gerührt wurde. Testlösungen, die keine MBs enthielten, wurden durch einen 0,2-µm Mikroporenfilter (Nalgene, Rochester, NY, USA) oder einen 0,22-µm Mikroporenfilter (Millex, Darmstadt, Deutschland) filtriert. Aliquote (200 µL) der Rezeptorlösung wurden nach 0, 1, 2, 3, 4, 6, 8, 10, 12 und 24 Stunden entnommen und durch das gleiche Volumen frischer Rezeptorlösung ersetzt.

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Die erhaltenen Proben wurden bis zur Analyse mittels Hochleistungsflüssigkeitschromatographie (HPLC) in einem Gefrierschrank aufbewahrt. Am Ende der Penetrationsexperimente (nach 24 Stunden) wurde die Hautprobe von den Diffusionszellen gelöst, fünfmal sorgfältig mit destilliertem Wasser gespült, um überschüssiges -Arbutin von der Oberfläche zu entfernen, und in 0 geschnitten.{{4 }}g Stücke und homogenisiert mit 1 ml Rezeptorlösung für 2 Minuten bei 10,000 U/min (Polytron-Aggregate PT3100, Kinematica, Luzern, Schweiz). Die homogenisierte Suspension wurde zweimal 25 Minuten lang bei 3100 × g (Thermo Fisher Scientific) und 4 °C zentrifugiert, bevor die Konzentrationen von -Arbutin im Überstand mittels HPLC bestimmt wurden.

2.5. HPLC-Analyse von -Arbutin

Zur Messung der Arbutinkonzentrationen wurde eine Inspire™ C18-Säule (250 mm × 4,6 mm, 5 µm Partikelgröße; Dikma Technologies, Lake Forest, CA, USA) verwendet. Das HPLC-System war mit einer binären Pumpe (PU-2089, Jasco, Tokio, Japan) ausgestattet und die Wellenlänge des Ultraviolettdetektors (UV-2075, Jasco) wurde auf 280 nm eingestellt. Die mobile Phase bestand aus Methanol:destilliertem Wasser (pH 5,5, 70:30 v/v) [18] mit einer Geschwindigkeit von 0,6 ml/min. Alle zu analysierenden Proben wurden in einem Volumen von 20 µL injiziert. Die Retentionszeit von -Arbutin betrug etwa 4,3 Minuten.

2.6. Tierbehandlungen

Der Melaningehalt von Organoiden wurde im C57BL/6J-Mausmodell untersucht [19]. Fünf Wochen alte Mäuse mit einem Gewicht von 20–25 g wurden von Bio Lasco (Taipeh, Taiwan) bezogen. Das Versuchsprotokoll wurde vom Institutional Animal Care and Use Committee des National Defense Medical Center, Taipei, Taiwan, genehmigt. Die Verfahren zur Tierpflege entsprachen den institutionellen Richtlinien und Vorschriften (Genehmigungsnr. IACUC-17-092). Während der gesamten Experimente wurden die Tiere in Edelstahlkäfigen in einem klimatisierten Raum mit einer Temperatur von 25–28 °C und abwechselnden Hell-Dunkel-Zyklen von jeweils 12 Stunden gehalten.

Die Tiere wurden vor dem Experiment 7 Tage lang akklimatisiert. Nachdem ihre Haare auf einer Fläche von 2 cm × 2 cm entfernt worden waren, wurde die Hautfarbe mit einem Chromameter (CR-400, Konica Minolta Sensing, Tokio, Japan) gemessen. Anschließend wurden die Tiere dreimal ultravioletter B-Strahlung (UVB) (G8T5E, Sankyo, Tokio, Japan) ausgesetzt, um eine Hyperpigmentierung auszulösen (Gesamtenergiedosis pro Exposition=1 J/cm2, Wellenlänge=306 nm). Woche für 2 Wochen), und dann wurde die Hautfarbe erneut gemessen.

Die Tiere wurden in die folgenden fünf Gruppen eingeteilt (n {{0}} pro Gruppe, Behandlung einmal alle 3 Tage für 20 Tage): (1) keine Behandlung (Gruppe C); (2) Anwendung von penetrierendem Arbutin allein (300 µg/ml, 0,2 ml/cm2) (Gruppe A); (3) direkte Laserbestrahlung der Haut mit der Anwendung von durchdringendem Arbutin (300 µg/ml, 0,2 ml/cm²) (Gruppe L plus A); (4) Laserbestrahlung der mit Kochsalzlösung bedeckten Haut und Anwendung von durchdringendem Arbutin (300 µg/ml, 0,2 ml/cm²) (Gruppe L plus S plus A); und (5) Laserbestrahlung der Haut in Kombination mit MBs auf der Haut und der Anwendung von penetrierendem Arbutin (300 µg/ml, 0,2 ml/cm2) (Gruppe L plus MBs plus A). Die durch jede der Behandlungen hervorgerufene Veränderung der Hautfarbe wurde zu vorgegebenen Zeitpunkten mit dem Chromameter beurteilt. Der Leuchtkraftindex L [20] wurde an jedem Messtag vor und nach der Behandlung berechnet.

2.7. Histologische Studie

Unmittelbar nach den Experimenten wurden Hautgewebeproben (ca. 8 mm × 8 mm) aus dem Behandlungsbereich entnommen und in einer 10-prozentigen Formalinlösung aufbewahrt. Es wurde eine Hämatoxylin- und Eosin-Färbung (HE; Sigma-Aldrich) angewendet und die Proben von einem erfahrenen Dermatopathologen (HWG) analysiert. Einige andere Proben wurden mit Fontana-Masson-Silbernitrat (Kojima Chemical, Kashiwabara, Japan) 30 Minuten lang bei 60 °C gefärbt, dann mit destilliertem Wasser gewaschen und 2 Minuten lang in 5-prozentiger Natriumthiosulfatlösung (Duksan, Seoul, Korea) fixiert min, bevor erneut mit destilliertem Wasser gewaschen wird. Anschließend wurden die Proben 5 Minuten lang mit nuklearer Echtrotlösung (Fluka, Buchs, Schweiz) gefärbt und zweimal mit destilliertem Wasser gewaschen. Abschließend wurden die Proben in 95-prozentigem Ethanol und anschließend in 100-prozentigem Ethanol dehydriert und anschließend zweimal mit Xylol (Duksan) gewaschen [21].

2.8. Statistische Analyse

Die erhaltenen Daten wurden statistisch mit dem Student-t-Test analysiert. Ein Wahrscheinlichkeitswert von p < 0.05 wurde als Hinweis auf einen signifikanten Unterschied angesehen.

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3. Ergebnisse

3.1. Laserinduzierte MB-Störung

Mikroskopbilder von fünffach verdünnten MBs ohne und mit Bestrahlung durch einen kontinuierlichen 10,8-mW-Laser (luftgekühlter Argon-Ionen-Laser) und einen gepulsten 10,8-mW-Laser (Superkontinuumsfaser) für 60, 120 und 180 s sind in Abbildung 2 dargestellt Die Zerstörungsraten des gepulsten Lasers stiegen um 17,66 Prozent, 20,52 Prozent und 39,05 Prozent im Vergleich zum kontinuierlichen Laser bei 60, 120 bzw. 180 s. Abbildung 3 zeigt die Zerstörungswirksamkeit von fünf- und zehnfach verdünnten MBs bei Verwendung eines gepulsten Nd:YAG-Lasers bei 60, 120 und 180 s. Die Zerstörungsraten von fünf- und zehnfach verdünnten MBs betrugen 72,46 Prozent bzw. 78,59 Prozent bei 60 Sekunden, 88,06 Prozent, 96,10 Prozent bei 120 Sekunden, 85,22 Prozent und 98,80 Prozent bei 180 Sekunden. Abbildung 4 zeigt die Zerstörungswirksamkeit zehnfach verdünnter MBs bei ein-, drei- und siebenmaliger Bestrahlung mit dem klinischen CO2-Fraktionspulslaser. Die Zerstörungsrate stieg mit der Bestrahlungsdauer und lag bei siebenmaliger Bestrahlung bei nahezu 100 Prozent. Daher wurde diese Bedingung in den nachfolgenden In-vitro- und In-vivo-Experimenten verwendet.

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