Die aktiven Komponenten und die antioxidative Aktivität von frisch geschnittenem Cistanche Deserticola YC Ma durch mikroporöse Membranverpackung mit modifizierter Atmosphäre

Zusammenfassung: Um die Lagerqualität nach der Ernte zu untersuchenCistanche Deserticolagepflanzt in Xinjiang, die Behandlung mit aktiver modifizierter Atmosphäre (6 Prozent CO2 plus 4 Prozent O2 plus 90 Prozent N2) kombinierte verschiedene Verpackungsmaterialien mit PE-Folie (Sauerstoffdurchlässigkeit 300 cm3 /(m2·d)), mikroporöse Membran M1 (Sauerstoffdurchlässigkeit {{10} } cm3/(m2·d)) und eine mikroporöse Membran M2 (Sauerstoffpermeation 8 000 cm3/(m2·d)) wurden verwendet, um den Frischschnitt zu behandelnCistanche Deserticola. Die Auswirkungen auf die Änderungen der aktiven Komponenten und antioxidativen Aktivitäten wurden bei Lagerung bei niedriger Temperatur (4±0,5) Grad untersucht. Die Ergebnisse zeigten, dass die PPO-Aktivität und der Bräunungsgrad in der Behandlungsgruppe mit einer mikroporösen Membran mit modifizierter Atmosphäre (6 Prozent CO2 plus 4 Prozent O2 plus 9 0 Prozent N2 plus M1) 2,07 U·/g und 0,57 OD410/g betrugen, was waren niedriger als die CK-Gruppe nach Lagerung für 7 Tage. Der Inhalt von Vc,Gesamtphenole,Flavonoide, Gesamtpolysaccharide, EchinosidundCalykosidwaren 13,00 %, 5,88 %, 11,24 %, 14,45 %, 1,20 % und 1,47 % höher als die der CK-Gruppe. In der Zwischenzeit waren die DPPH, ABTS plus Abfangrate für freie Radikale und der FRAP-Wert bei 6 Prozent CO2 plus 4 Prozent O2 plus 90 Prozent N2 plus mikroporöser M1-Membranbehandlungsgruppe um 8,97 Prozent, 1,99 Prozent bzw. 11,43 Prozent höher als in der CK-Gruppe. Zusammenfassend lässt sich sagen, dass die Behandlung mit 6 Prozent CO2 plus 4 Prozent O2 plus 90 Prozent N2 plus M1 die Abnahme der aktiven Komponenten signifikant verzögern, eine höhere antioxidative Kapazität aufrechterhalten und die Haltbarkeit von C. deserticola verlängern könnte. Diese Studie stellt eine effiziente Konservierungsmethode für frisch geschnittene C. deserticola bereit, die die Fähigkeit der Arzneimittel-Nahrungsmittelhomologie besser aufrechterhält.

Schlüsselwörter:Cistanche DeserticolaYC Ma; Verpackung unter Schutzatmosphäre; mikroporöse Membran; Nichtoxidierbarkeit

Klicken Sie hier, um mehr Details über Cistanche zu erfahrenDeserticolaFunktion

FRAGEN SIE NACH WEITERE DETAILS ÜBER CISTANCCHE:

wallence.suen@wecistanche.com

Cistanche Deserticola (Cistanche deserticola YC Ma) ist eine parasitäre Pflanze der GattungCistanche Deserticolain der FamilieCistanche. Es ist warm in der Natur und süß im Geschmack. Es enthält verschiedene Wirkstoffe wie Polysaccharide, Phenylethanolglykoside, Flavonoide, Polyphenole und Alkaloide[1,2]. Es hat die Funktionen, das Nieren-Yang zu beleben, Essenz und Blut zu fördern, den Darm zu befeuchten und Abführmittel, Müdigkeit zu lindern, das Altern zu verzögern und

Verbessern Sie die Immunität und andere Effekte [3,4]. Derzeit die meistenCistancheauf dem Markt verkauft werden, sind getrocknete Produkte, und beim Trocknungsprozess wird die traditionelle Methode der Sonnentrocknung verwendet, wodurch einige Wirkstoffe verloren gehenCistancheund schwächt die Wirksamkeit vonCistanche. Frisch geschnittenes Obst und Gemüse zeichnet sich durch Convenience, Schnelligkeit und hohen Frischegrad aus. Sie werden von den Verbrauchern sehr geliebt und sind nach und nach zum Mainstream der Verarbeitung von frischem Obst und Gemüse geworden [5]. Verpackungen mit modifizierter Atmosphäre werden aufgrund ihrer hohen Effizienz, Sicherheit und niedrigen Kosten häufig in der Obst- und Gemüsekonservierung eingesetzt. Die Behandlung mit modifizierter Atmosphäre in der Mikroumgebung verlangsamte effektiv den Rückgang des Gehalts an löslichen Feststoffen (TSS), titrierbarer Säure (TA), Vc und Anthocyanin in Heidelbeerfrüchten während der Lagerung, sodass sie immer noch einen hohen Nährwert beibehielten[6] . Eine kontrollierte Atmosphäre in Kombination mit einer Phasentemperaturbehandlung kann den Gehalt an reduzierendem Zucker, löslichem Protein und Flavonoiden in Lilie effektiv aufrechterhalten, die Bildung von Alkoholen und Estern hemmen, die antioxidative Kapazität verbessern und das Auftreten von Bräunung reduzieren [7].

Die mikroporöse Membran kombiniert ihre eigene spezifische Luftdurchlässigkeit mit der Atmung von Obst und Gemüse, um die Gaszusammensetzung in der Verpackung spontan anzupassen [8], so dass das Gasverhältnis in der Verpackung ein dynamisches Gleichgewicht erreicht und den Rückgang der Lagerqualität effektiv verzögert und oxidative Alterung von Obst und Gemüse [9] . Verpackungen mit mikroporöser Membran und modifizierter Atmosphäre können den Rückgang des löslichen Proteingehalts und des Chlorophyllgehalts von grünem Edamame wirksam verlangsamen [10], den Abbau von Chlorophyll in Gurken wirksam reduzieren, die Produktion von O 2- verlangsamen und die Aktivität erhöhen von verwandten antioxidativen Enzymen zur gleichen Zeit. Stressresistenz von Gurken [11].

Erhöhte den Gehalt an Gesamtphenolen und Gesamtanthocyanen in Granatapfelschalen und verstärkte die antioxidative Aktivität [12]. Es gibt nur wenige Berichte über die Verpackungstechnologie der modifizierten Atmosphäre mit mikroporösen Membranen in der Erforschung von Fresh-CutCistanche Deserticola. Mikroporöse Membranverpackungen mit modifizierter Atmosphäre können die Nährstoffe in Obst und Gemüse effektiv erhalten und haben einen signifikanten Einfluss auf die antioxidative Kapazität [11,13], aber es gibt nur wenige Studien zu den Veränderungen der aktiven Komponenten und antioxidativen Eigenschaften von frisch geschnittenem Cistanche Deserticola. Daher wurde in diesem Artikel die mikroporöse Membran mit modifizierter Atmosphäre verwendet, um die frisch geschnittenen Cistanche und die Änderungen der aktiven Komponenten der frisch geschnittenen Cistanche zu verpackenCistancheund ihre Auswirkungen auf die antioxidative Aktivität während der Lagerung wurden untersucht. Um eine technische Grundlage für die Studie über die Homologie von Medizin und Nahrung zu schaffenCistanche Deserticola.

1 Materialien und Methoden

1.1 Materialien und Reagenzien

Cistanche: im November 2021 in Hotan, Xinjiang gekauft und für 24 Stunden bei 10 Grad in ein Kühlhaus transportiert.Frische Cistancheohne mechanische Beschädigung, ohne Schädlinge und Krankheiten und mit einheitlicher Größe und Dicke (ungefähr 4 cm im Durchmesser) wurde für die anschließende experimentelle Forschung ausgewählt. PE-Folie (Dicke 40 μm, Sauerstoffdurchlässigkeit 300 cm3/(m2 d)), 6 000-poröse mikroporöse Membran (Dicke 25 μm, Sauerstoffdurchlässigkeit 6 000 cm3

/(m2 d)), 8 000-poröse mikroporöse Membran (Dicke 25 μm, Sauerstoffdurchlässigkeit 8 000 cm3/(m2 d)), alle bereitgestellt von Jiangsu Jiubang New Material Technology Development Co., Ltd. Chromatographisch reines Acetonitril und Ameisensäure, Merck, Deutschland; chromatographisch reines Standardverbascosid und Echinacosid, Abel Co., Ltd.; Natriumchlorid, Zitronensäure, Natriumbisulfit, L-Cystein, Calciumchlorid, Natriumhypochlorit, Guajakol, Polyethylenglycol, Catechin, Ascorbinsäure, Kaliumpersulfat (K2S2O8) Tianjin Guangfu Fine Chemical Research Institute; 1,1-Diphenyl-2-trinitrophenylhydrazin (1 ,1-diphenyl-2-picrylhdrazyl, DPPH), 2,2'-Azino-bis(3-ethyl-benzothiazol -6-Sulfonsäure)diammoniumsalz (2,2'-Azino-bis(3 -ethylbenzothiazolin-6)-sulfonsäurediammoniumsalz), ABTS), 2,4,6- Tripyridyltriazin (2,4,6-Tris(2-pyridyl)-s-triazin, TPTZ), Beijing Cool Chemical Technology Ltd.; Die oben genannten Reagenzien sind analysenrein.

1.2 Prüfgeräte

UV-2600-Ultraviolett-Spektrophotometer, Shimadzu Corporation, Japan; HC-3018R Hochgeschwindigkeits-Kühlzentrifuge, Agilent-1100 Hochleistungsflüssigkeitschromatographie, PerkinElmer, USA; MS105DU 1/100, 000 Analysenwaage, Mettler Toledo, Schweiz ; SPX-100BZ Box für konstante Temperatur und Luftfeuchtigkeit, Shanghai Boxun Industrial Co., Ltd.

1.3 Prüfverfahren

Frische Cistanchenach 24-stündigem Vorkühlen geschält, gewaschen, in Stücke geschnitten, farbgeschützt und sterilisiert und anschließend in Verpackungskartons (Länge×Breite×Höhe =180 mm×140 mm×5 mm, 200 g pro Karton). PE-Folie, mikroporöse Folie mit 6 000-Poren und mikroporöse Folie mit 8 000-Poren wurden für Verpackungen mit modifizierter Atmosphäre verwendet (Heißsiegeltemperatur war 140 Grad, Heißsiegelzeit war 2 s und das Verhältnis von modifizierte Atmosphäre war 4 Prozent O2 plus 6 Prozent CO2 plus 90 Prozent N2), die im Text als CK, M1 bzw. M2 bezeichnet werden. Unmittelbar nach der Behandlung wurden sie in einem Inkubator mit konstanter Temperatur bei einer Temperatur von (4 ± 0,5) Grad und einer relativen Feuchtigkeit von (90 ± 1) Prozent gelagert. Jede Behandlung wurde dreimal wiederholt, und Proben wurden jeden Tag für insgesamt 7 Tage entnommen. Nachdem die Proben pulverisiert worden waren, wurden sie mit flüssigem Stickstoff behandelt und in einem -40-Grad-Kühlschrank für die Bestimmung nachfolgender Indikatoren gelagert.

1.4 Methode zur Indexbestimmung

1.4.1 Bestimmung von O2, CO2-Volumenanteil, PPO-Aktivität und Bräunungsgrad

Der tragbare Headspace-Analysator Check Point 3 wurde verwendet, um regelmäßig die Prozentsätze von O2 und CO2 in der Verpackung verschiedener Behandlungsgruppen zu messen, die Einheit ist Prozent, und die Bestimmung der Aktivität jedes PPO wurde nach der Methode von Cao Jiankang durchgeführt [14].

Der Bräunungsgrad wurde leicht modifiziert nach der Extinktionswertmethode [14] bestimmt. 2,0 g Cistanche cistanche genau wiegen, nach der Homogenisierung in ein 50-ml-Zentrifugenröhrchen geben, destilliertes Wasser in einem Verhältnis von 1:10 (g:ml) hinzufügen, bei 4 Grad zentrifugieren, {{7} } × g für 5 min, den Überstand nehmen und in ein 25-Grad-Wasserbad geben. Den Topf bei konstanter Temperatur 5 min einweichen, die Extinktion des Überstands bei 410 nm messen und das Ergebnis als OD410/g ausdrücken.

1.4.2 Bestimmung von Vc, Gesamtphenolen und Flavonoiden

Bestimmung des Vc-Gehalts, des Gesamtphenolgehalts und des Flavonoidgehalts: mit spektrophotometrischer Methode [14].

1.4.3 Bestimmung des Gesamtpolysaccharidgehalts

Sie wurde nach der Phenol-Schwefelsäure-Methode bestimmt und leicht modifiziert nach der Methode von Zhao Yan et al. [fünfzehn]. Vorbereitung der Probenflüssigkeit: 1,0 g Cistanche-Cistanche-Probenpulver gemäß dem Verhältnis von Feststoff zu Flüssigkeit 1:30 (deionisiertes Wasser) genau wiegen, bei 50 Grad für 60 Minuten mit Ultraschall extrahieren, bei 4 Grad zentrifugieren , 8000 × g für 5 min, und Überstand nehmen, hinzufügen

Fügen Sie 95-prozentiges Ethanol hinzu, bis die Ethanolkonzentration 80 Prozent beträgt, lassen Sie es 12 Stunden lang bei 4 Grad stehen, verwerfen Sie den Überstand, waschen Sie den Niederschlag zweimal mit absolutem Ethanol und Aceton, fügen Sie entionisiertes Wasser hinzu und verwenden Sie Abwasserlösung (Chloroform: n-Butanol { {5}}:1), um das Protein zu entfernen und nach konstantem Volumen zu testen. 600 μl 6-prozentige Phenollösung und 3 ml konzentrierte Schwefelsäure zu 1 ml der Probenlösung geben, mischen und 10 min in ein kochendes Wasserbad stellen und nach dem Abkühlen die Extinktion bei 490 nm messen. Bereiten Sie die Standardlösung mit Glucose vor, um die Standardkurvengleichung zu zeichnen, und die Messergebnisse werden in Glucoseäquivalent (mg DE/g DW) ausgedrückt.

1.4.4 Bestimmung von Echinacosid und Verbascosid

Herstellung von Referenzsubstanzen: Nehmen Sie eine geeignete Menge der Standardsubstanzen von Verbascosid und Echinacosid (beide Reinheit größer oder gleich 98 Prozent), messen Sie sie jeweils genau, fügen Sie 5 0 Prozent Methanol hinzu, um eine Stammlösung mit einer Konzentration von herzustellen 1.0 mg/mL, und nehmen Sie dann eine geeignete Menge Stammlösung gemischt, um die entsprechende Konzentration von 0.05 mg/mL, {{1{{12 }}}}.10 mg/ml, 0,15 mg/ml, 0,2 mg/ml, 0,3 mg/ml, 0,4 mg/ml

Mischung. Nehmen Sie die Peakfläche (Y) als Ordinate und zeichnen Sie die Standardkurve mit der Qualität der Referenzsubstanz (X, mg).

Herstellung der Testlösung: In flüssigem Stickstoff eingefrorene Probe im Vakuum gefriertrocknen, nach Gefriertrocknung durch Sieb (Nr. 4) passieren. 1,0 g Cistanche-Pulver genau abwiegen, in eine braune 50-ml-Messflasche geben, 25 ml 50-prozentiges Methanol hinzufügen, gut schütteln und 30 min einweichen, 40 min beschallen, abkühlen

Fügen Sie dann 5 0 Prozent Methanol zum Gewicht vor der Ultraschallbehandlung hinzu, lassen Sie es stehen, nehmen Sie den Überstand und filtern Sie ihn mit einer 0,45-μm-mikroporösen Membran.

Chromatographische Bedingungen: Agilent Eclipse XDB-C18-Säule (4,6 mm × 25 0 mm, 5 μm), Detektionswellenlänge 254 nm), Säulentemperatur 25 Grad; Acetonitril (A)-0.1 Prozent wässrige Ameisensäurelösung (B) als Fließphase, Gradientenelution (0-20 min, 5 Prozent -15 Prozent A; 20-40 min, 15 Prozent -30 Prozent ); Flussrate 1,0 ml/min, Injektionsvolumen 10 μl.

1.4.5 Bestimmung der antioxidativen Aktivität in vitro

1.4.5.1 DPPH-Fähigkeit zum Abfangen freier Radikale[16]

Bereiten Sie genau {{0}},2 mmol/L DPPH-Ethanollösung vor und stellen Sie sie unter dunkle Bedingungen (sofortiger Gebrauch). Ai: 0,5 ml 0,2 mmol/LDPPH Ethanollösung; Ac: 0,5 ml absolutes Ethanol plus {{10}},5 ml 0,2 mmol/LDPPH Ethanollösung; Aj: 0,5 ml Probelösung plus 0,5 ml absolutes Ethanol. Im Dunkeln bei Raumtemperatur für 30 Minuten lagern, den Extinktionswert bei 517 nm messen und gemäß der folgenden Formel berechnen: DPPH-Radikalfängerrate/Prozent=[1Ai-AjAc ] × 100 (1)

1.4.5.2 Die Bestimmung von ABTS plus Radikalfängerfähigkeit bezieht sich auf die Methode von Tang Yanping [17].

1.4.5.3 Die Bestimmung der Eisen(III)-Reduktions-/Antioxidationskraft (FRAP) wird nach dem Verfahren von Wang Miaomiao et al. [18].

1.5 Datenstatistik und -analyse

Excel 2010 wurde für die Datenverarbeitung verwendet, SPSS20.0 wurde für die Einweg-Varianzanalyse verwendet und die Software GraphPad Prism8.0 wurde verwendet grafisch darstellen. P Weniger als oder gleich 0,05 zeigt einen signifikanten Unterschied an, und Weniger als oder gleich 0,01 zeigt einen extrem signifikanten Unterschied an.